6 главных проблем двигателя ВАЗ 1.6 — журнал За рулем

Почему заводская инструкция умалчивает, что этот мотор — единственный на рынке — требует обкатки? ЗР знает ответ.

1. История

Материалы по теме

Нынешняя модификация мотора 1.6 корнями восходит к двигателям, специально созданным для поперечного расположения на автомобилях семейства ВАЗ-2108. Изначально это был карбюраторный мотор рабочим объемом 1,3 л. В его доводке принимали участие специалисты фирмы Porsche. Двигатель имел конструкцию и характеристики, отвечавшие требованиям того времени. Впервые ВАЗ-2108 с новым мотором показали широкой публике на выставке «Автопром-84». Для отечественного автостроения это был огромный шаг вперед, хотя в общемировом масштабе тольяттинский мотор являлся технически устаревшим сразу после его появления. Зарубежные двигатели уже примеряли системы впрыска топлива, а карбюраторы некоторых модификаций напоминали пауков с кучей трубочек и приводов для коррекции топливоподачи на разных режимах.

Какие же конструктивные особенности повлияли на всю дальнейшую судьбу семейства двигателей ВАЗ для переднеприводных автомобилей? Поперечное расположение потребовало «короткого» блока цилиндров. Вначале работы велись над двигателем 1,3 л с диаметром цилиндров 76 мм. Было принято межцилиндровое расстояние, равное 89 мм. Когда при создании модификаций большего рабочего объема увеличили диаметр цилиндров до 82 мм, стало невозможным обеспечить протоки рубашки охлаждения между цилиндрами, что вызвало увеличение теплонапряженности двигателя и заставило искать новые способы охлаждения цилиндров. Дальнейшее повышение рабочего объема было получено путем увеличения рабочего хода до 75,6 мм. Так получили двигатель рабочим объемом 1596 см3.

Сегодня различные модификации вазовского двигателя 1.6 устанавливают на целый ряд автомобилей: Лада Гранта, Ларгус, Веста и Иксрей, а еще Datsun on-DO и mi-DO.

Сегодня различные модификации вазовского двигателя 1.6 устанавливают на целый ряд автомобилей: Лада Гранта, Ларгус, Веста и Иксрей, а еще Datsun on-DO и mi-DO.

2. Приобретенные недостатки

Коленвал у двигателя 1,6 вполне современен, он полнопротивовесный, то есть на продолжении каждой щеки вала имеется противовес (всего восемь штук). Импортные моторы часто располагают лишь четырьмя противовесами. Экономят.

Всюду видно «похудение». Тонкий стержень шатуна переходит в уменьшенную нижнюю головку. Поршень облегчен до предела. Оставлена зона расположения поршневых колец и два небольших «язычка», заменяющих прежнюю полноценную юбку.

Всюду видно «похудение». Тонкий стержень шатуна переходит в уменьшенную нижнюю головку. Поршень облегчен до предела. Оставлена зона расположения поршневых колец и два небольших «язычка», заменяющих прежнюю полноценную юбку.

Короткая юбка поршня — в духе современного автостроения, но такое решение не лучшим образом влияет на моторесурс. Мало того, что опорная поверхность поршня мала, так еще и перекладка (боковые колебания) возможны больше, чем со старыми, высокими поршнями.

Шатуны нынешней модификации двигателя стали заметно тоньше по сравнению со старыми, с индексом 2108. А еще появилась высокотехнологичная отламываемая крышка шатуна, но значительно уменьшилась ширина шатунного вкладыша. Да, массу шатуна таким образом удалось немного снизить. Но это однозначно повысило нагрузки на подшипник. При этом ширина шейки на валу осталась прежней . Вполне можно было бы ставить шатун с «широкой» нижней головкой.

Хорошо видно, насколько нижняя головка шатуна ýже шейки коленвала.

Хорошо видно, насколько нижняя головка шатуна ýже шейки коленвала.

3. Привод ГРМ

Вазовский двигатель последней генерации стал «невтыковым» (то есть при обрыве ремня ГРМ поршни не гнут клапаны), что, с одной стороны радует, а с другой навевает печаль. Почему-то больше ни один автопроизводитель в мире не печется о «невтыковой» конструкции. Выходит, что привод ГРМ у вазовцев настолько ненадежен, что производителю пришлось подстраховаться таким вот образом, предусмотрев выемки под клапаны на поршнях.

Материалы по теме

При этом за последние годы производитель почему-то уменьшил ширину ремня ГРМ. У «восьмерки» был ремень шириной ¾ дюйма — 19 мм, а сейчас стало 17 мм. То же самое касается и шестнадцатиклапанной версии двигателя. Был 1 дюйм (25,4 мм) в ширину, а теперь всего 22 мм. Зачем снизили несущую способность ремня? Ведь чем он шире, тем надежнее. Много ли резины сэкономили?

Мало того, что сам по себе ремень стал меньше в ширину, так он еще и работает в паре с не очень-то надежными узлами — роликами и насосом охлаждающей жидкости. Качество отечественных насосов — это головная боль всех владельцев вазовских переднеприводников, начиная с «восьмерки».

Впрочем, и наша культура обслуживания оставляет желать лучшего. Некоторые владельцы вазовской техники сами провоцируют неисправности: кто воду зальет в систему охлаждения, и замерзшая помпа порвет ремень ГРМ, а кто — антифриз поддельный, который погубит сальник и подшипник помпы. Известны случаи, когда такой антифриз в условиях высокотемпературной кавитации разрушал лопасти насоса. Еще одним слабым местом являются натяжной и обводной (паразитный) ролики привода ГРМ. При низком качестве подшипников или недостатке смазки возможен обрыв ремня ГРМ.

На рынке запчастей слишком много некачественных комплектующих для вазовских моторов. Один из самых проблемных узлов — насос охлаждающей жидкости. Его следует выбирать особенно тщательно.

На рынке запчастей слишком много некачественных комплектующих для вазовских моторов. Один из самых проблемных узлов — насос охлаждающей жидкости. Его следует выбирать особенно тщательно.

На надежность мотора еще влияет конструкция и материалы, из которых изготовлены элементы системы охлаждения. Ненадежный термостат может способствовать перегреву или переохлаждению мотора. Шланги низкого качества способны оставить двигатель без охлаждающей жидкости. А еще часто трескается расширительный бачок.

4. Особенности эксплуатации и обслуживания

Материалы по теме

Вазовский мотор имеет чугунный блок цилиндров. Чугун как конструкционный материал хорош тем, что допускает неоднократную расточку цилиндров под ремонтные размеры. Однако на большинстве моторов импортного производства в паре с чугунным блоком (да и с алюминиевым тоже), используют поддон картера в виде прочной отливки из алюминиевого сплава. Такая конструкция, изначально рассчитанная как одно целое при проектировании, значительно повышает жесткость всей нижней части двигателя. Это уменьшает деформации постелей коленвала и искажения формы цилиндров под действием нагрузок.

А вот на тольяттинский мотор, который работает в паре с вазовской механикой или АМТ (в основе которой все та же вазовская МКП), устанавливают «жестяной» поддон с мягкой прокладкой. Жесткость всей конструкции при этом значительно меньше. Это одна из причин, по которой вазовский двигатель до сих пор требует обкатки.

Конечно, в инструкции давно нет информации об этом. Сказано лишь, что на первых тысячах километров пробега желательно не перегружать двигатель. Однако статистика редакционных машин из Тольятти говорит о том, что расход масла уменьшается и стабилизируется на минимальном уровне после пробега порядка 10 000 км. Что-то в вазовском моторе прирабатывается. При этом у большинства иномарок расход масла в двигателе с самого начала эксплуатации мизерный.

Тольяттинские моторы, работающие в паре с вазовской коробкой передач, довольствуются поддонами, штампованными из тонкой листовой стали.

Тольяттинские моторы, работающие в паре с вазовской коробкой передач, довольствуются поддонами, штампованными из тонкой листовой стали.

А еще конструкция привода клапанов на восьмиклапанной версии двигателя (ВАЗ-11186) довольно часто требует регулировки. К примеру, у популярных Hyundai Solaris и Kia Rio в гамме тоже имеется двигатель без гидрокомпенсаторов, однако регламент обслуживания значительно реже требует регулировки зазоров. Более того, реальная потребность в этой работе, как правило, наступает при больших пробегах.

Шестнадцатиклапанные вазовские моторы снабжены гидрокомпенсаторами, к работе которых претензий нет.

5. Конкурентоспособен или нет?

Технические характеристики двигателя ВАЗ 1.

6

Показатели отечественного мотора рабочим объемом 1,6 л весьма далеки от современных. Судите сами: большинство зарубежных двигателей рабочим объемом 1,6 л имеют мощность более 120 л. с. И это свидетельствует о том, что конструкция вазовского мотора устарела. Даже примененная на 106-сильной версии двигателя управляемая длина впускного трубопровода не заменит систем изменения фаз газораспределения.

А ведь на иномарках ее внедряют и на выпускной распределительный вал (в дополнение к впускному). Вообще, если вспомнить знаменитые хондовские моторы девяностых годов, то они за счет управления газораспределением и высоких оборотов выдавали порядка 160 л.с. и более при рабочем объеме 1.6 л. И это были безнаддувные двигатели для массовых машин.

Аналогичная линейка силовых агрегатов у партнера по альянсу — компании Renault. Имея схожие технические характеристики, французские моторы, тем не менее, более совершенны с конструктивной точки зрения. Да и по части надежности обыгрывают вазовские двигатели.

Аналогичная линейка силовых агрегатов у партнера по альянсу — компании Renault. Имея схожие технические характеристики, французские моторы, тем не менее, более совершенны с конструктивной точки зрения. Да и по части надежности обыгрывают вазовские двигатели.

6. Маркетинговый просчет

Материалы по теме

Автовладельцы негативно относятся к моторам, у которых мощность чуть за 100 л.с. Ведь такая мощность подразумевает более высокий налоговый коэффициент, а отдача от мотора при этом по-прежнему минимальная по современным меркам. Именно поэтому модификация 21127, на мой взгляд, особого смысла не имеет.

Семейство вазовских двигателей было вполне конкурентоспособным сорок лет назад, когда его создавали. Теперь двигатель морально устарел, так и не излечившись от некоторых болячек. Считаю, что ВАЗу нужно перейти на другую моторную базу. Выпускать лицензионные моторы или разрабатывать свой, но нужен новый двигатель внутреннего сгорания еще до того, как его заменит электромотор.

Высказывайте свои мнения в комментариях, ведь я только поделился своим личным опытом эксплуатации и ремонта.

Фото: «За рулем» и из архива автора

дилер LADA в г.

Москва (Москва и МО)

Технические характеристики Lada Granta Кросс

	1. 6 л 16-кл. (106 л.с.), 5АМТ	1.6 л 16-кл. (106 л.с.), 5МТ	1.6 л 8-кл. (87 л.с.), 5МТ
Кузов
Колесная формула / ведущие колеса	4 х 2 / передние	4 х 2 / передние	4 х 2 / передние
Расположение двигателя	переднее поперечное	переднее поперечное	переднее поперечное
Тип кузова / количество дверей	универсал / 5	универсал / 5	универсал / 5
Количество мест	5	5	5
Длина / ширина / высота по рейлингам, мм	4148 / 1700 / 1560	4148 / 1700 / 1560	4148 / 1700 / 1560
База, мм	2476	2476	2476
Колея передних / задних колес, мм	1430 / 1418	1430 / 1418	1430 / 1418
Дорожный просвет при снаряженной массе, мм	198	198	198
Объем багажного отделения в пассажирском / грузовом вариантах, л	355 / 670	355 / 670	355 / 670
Двигатель
Код двигателя	21127	21127	11186
Тип двигателя	бензиновый	бензиновый	бензиновый
Система питания	впрыск топлива с электронным управлением	впрыск топлива с электронным управлением	впрыск топлива с электронным управлением
Количество, расположение цилиндров	4, рядное	4, рядное	4, рядное
Рабочий объем, куб. см	1596	1596	1596
Максимальная мощность, кВт (л.с.) / об. мин.	78 (106) / 5800	78 (106) / 5800	64 (87) / 5100
Максимальный крутящий момент, Нм / об. мин.	148 / 4200	148 / 4200	140 / 3800
Рекомендуемое топливо	бензин 95	бензин 95	бензин 95
Динамические характеристики
Максимальная скорость, км/ч	178	178	166
Время разгона 0-100 км/ч, с	12,7	10,8	12,2
Расход топлива
Городской цикл, л/100 км	8,7	8,7	9,1
Загородный цикл, л/100 км	5,2	5,2	5,3
Смешанный цикл, л/100 км	6,5	6,5	6,8
Масса
Снаряженная масса, кг	1125. ..1160	1125…1160	1125…1160
Технически допустимая максимальная масса, кг	1560	1560	1560
Максимальная масса прицепа без тормозной системы / с тормозной системой, кг	450 / 900	450 / 900	450 / 900
Объем топливного бака, л	50	50	50
Трансмиссия
Тип трансмиссии	5АМТ	5МТ	5МТ
Передаточное число главной передачи	3,9	3,9	3,9
Подвеска
Передняя	независимая, типа Макферсон, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами, со стабилизатором поперечной устойчивости	независимая, типа Макферсон, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами, со стабилизатором поперечной устойчивости	независимая, типа Макферсон, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами, со стабилизатором поперечной устойчивости
Задняя	полузависимая, рычажная, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами	полузависимая, рычажная, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами	полузависимая, рычажная, пружинная, с газонаполненными телескопическими амортизаторами
Рулевое управление
Рулевой механизм	шестерня-рейка	шестерня-рейка	шестерня-рейка
Шины
Размерность	195/55 R15 (85, H/V)	195/55 R15 (85, H/V)	195/55 R15 (85, H/V)

LADA Granta получит новый модернизированный мотор на 90 лошадиных сил от Largus FL

Недавно представленная новая модель Lada Largus стал первым автомобилем марки с модернизированным 8-клапанным двигателем 1. 6. Вскоре подобные силовые агрегаты появятся и на моделях Granta: в открытой базе Росстандарта опубликовали расширенное Одобрение типа транспортного средства (ОТТС) на данное семейство, в котором теперь присутствует модернизированный мотор.

Двигатель с индексом ВАЗ-11182 отличается от прежнего мотора ВАЗ-11186 модернизированной шатунно-поршневой группой (шатуны взяты у 1,8-литрового силового агрегата), а также облегченным коленвалом и измененным газораспределительным механизмом. Толкатели клапанов у модернизированного мотора почти такие же, как у двигателя Renault K7M, и теперь исключили необходимость регулировки клапанов до пробега 90 тыс. километров.

Мощность обновлённого мотора 1.6 увеличилась с 87 до 90 л.с., причем она теперь достигается чуть раньше (при 5000 об/мин взамен 5100 об/мин ранее). Максимальный крутящий момент тоже вырос: 143 Нм вместо 140 Нм при неизменных 3800 об/мин. Кроме того, производитель заявляет, что 80% тяги будут доступны уже при 1000 об/мин. В случае с моделью Largus новый двигатель позволил снизить время разгона до 100 км/ч с 14,2 до 14 секунд, примерно такая же разница ожидается и у Granta.

Подробности о семействе Lada Granta с модернизированным 8-клапанным мотором «АвтоВАЗ» озвучит позже, ведь сертификат на расширенное семейство хоть и опубликовали, но при этом он вступит в силу лишь 15 марта. Так что автомобили с более мощными силовыми агрегатами появятся в продаже не ранее апреля. Напомним, что на сегодняшний день на Granta также устанавливают 16-клапанные моторы 1.6 моделей ВАЗ-21126 (98 л.с., с автоматической трансмиссией Jatco) и ВАЗ-21127 (106 л.с., с МКПП), и они пока остались нетронутыми.

Двигатели Lada Largus – машину с каким мотором выбрать?

С 2017 года на универсалы Lada Largus полностью перестали устанавливать двигатели Renault. На смену мотору К4М пришел ВАЗ 21129 (16 клапанов). Двумя годами ранее, в 2015, АвтоВАЗ аналогичным образом отказался от двигателя К7М в пользу ВАЗ 11189 (8 клапанов).

Причина замены – стоимость моторов. ДВС отечественного производства обходятся дешевле. Но АвтоВАЗ решил не уменьшать цену Lada Largus, а сделать автомобиль комфортнее. В комплектацию добавились атермальные стекла, воздушный фильтр салона, датчик ремня и т.д.

В рамках статьи мы рассмотрим все 4 двигателя, которые устанавливались на Lada Largus. К7М, К4М, ВАЗ 11189 и ВАЗ 21129.

Двигатели Renault

Двигатели К7М (8 клапанов) и К4М (16 клапанов) – представители одной серии. При своевременном обслуживании они показывают отличный рабочий ресурс (свыше 400 тыс. км). Но если пропустить ТО, то оба мотора могут неприятно удивить. Например, и К7М, и К4М, гнут клапана при обрыве ремня ГРМ. Поэтому рекомендуется менять ремень каждые 60 (а лучше 50 тыс. км).

Подробнее о К7М (8 клапанов)

Изначально восьмиклапанный К7М имел 86 л. с. при объеме 1.6 литра. Но в 2010 году его доработали под стандарт Евро-4, и он потерял 3 лошадиные силы.

К7М имеет простую и надежную конструкцию. При своевременном уходе он может пройти до 500 тыс. км. Нужно лишь вовремя менять ГРМ, натяжные ролики и не пропускать ТО.

Слабые стороны двигателя:

• Большой расход топлива – 12,3 л/100 км в городе.
• Слабая мощность и динамика.
• Сильный шум и вибрация при работе.
• Нужно регулировать клапана каждые 25-30 тыс. км.

К7М – требовательный двигатель с большим расходом топлива и слабой динамикой. 83 л.с. недостаточно для комфортной езды на Lada Largus. Особенно сильно нехваток лошадиных сил заметен при вождении за городом.

Подробнее о К4М (16 клапанов)

Усовершенствованная версия К7М. Объем 1.6. литра и 102 л.с. Перенял проблемы предыдущей версии – большой расход топлива и требовательность к обслуживанию. Но может похвастаться намного лучшей динамикой при вождении. Устанавливался в комплектации «Люкс».

Слабые стороны двигателя:

• Большой расход топлива ¬ 11.7 л/км в городе.
• Дорогие запчасти.
• Возможны провалы в работе при некачественном топливе.
• Часто троит (обычно проблема в катушке зажигания, форсунках или свечах).

При своевременном обслуживании двигатель, как и К7М, может проехать больше 400 тыс. км.

Французские моторы К7М и К4М морально устарели, но они по-прежнему необычайно надежны в работе. Если человек готов смириться с большим расходом топлива и необходимостью регулярно посещать автосервис – Lada Largus с таким двигателем станет отличным выбором.

Если сравнивать только 2 мотора Renault, то К4М выигрывает. Он динамичнее, мощнее и проще в обслуживании.

Двигатели ВАЗ

Оба двигателя (ВАЗ 11189 и 21129) отличаются от французских предшественников увеличенной мощностью, лучшей тягой на низких оборотах и уменьшенным расходом топлива. Также, как К7М и К4М, двигатели ВАЗ гнут клапана при обрыве ремня ГРМ. По регламенту менять ремень следует раз в 180 тыс. км, но владельцы Lada Largus советуют посещать сервис каждые 60 тыс. км.

Подробнее о ВАЗ 11189 (8 клапанов)

Двигатель ВАЗ 11189 имеет 87 лошадиных сил (у К7М 83 л.с.) и максимальный крутящий момент 140 Нм (у К7М 124 Нм). Является доработанной под нормы Евро-4 версией мотора 11186.

В сравнении с французским аналогом имеет лучшую тягу на низких оборотах, сохраняет динамику даже при серьезной нагрузке и работает «тише». Достигается это за счет облегченной шатунно-поршневой группы.

Сильные стороны:

• Уменьшенный расход топлива – 9.1 л/км в городе (вместо 12.3 л/км).
• Лучшая динамика при разгоне и тяга на низких оборотах.
• Работает тише предшественника от Renault.
• Сравнительно недорогие запчасти.

Двигатель работает на бензине АИ-92 и АИ-95. Но автовладельцы отмечают, что заправлять лучше 95-ый. Езда на 92-ом бензине увеличивает расход топлива и уменьшает динамику при разгоне.

Распространенные проблемы ДВС 11189:

• Плавают обороты. Обычно проблема объясняется сбоем датчиков, в первую очередь нужно проверить электронный привод дроссельной заслонки Е-газ.
• Троит. Из-за сбоев в системе зажигания двигатель может начать троить. Если с системой зажигания все в порядке, то нужно проверить клапана.
• Перегрев. У ВАЗ 11189 весьма ненадежный термостат.

Большинство проблем объясняется отказом от планового ТО. При своевременном обслуживании и проверке датчиков, ДВС 11189 работает стабильно и показывает отличные результаты.

Подробнее о ВАЗ 21129 (16 клапанов)

ДВС 21129 – адаптация мотора 21127 под нормы Евро-5. Был создан для моделей Лада Веста и Х-рей и уже прошел проверку временем.

Сильные стороны:

• Уменьшенный расход топлива – 9.5 л/км в городе (вместо 11.7 л/км).
• Улучшенная динамика при разгоне.
• Тихая работа.

Двигатель 21129, как и 11189, может работать на АИ-92. Но рекомендуется заливать 95-ый бензин. На 92-ом увеличивается расход топлива и ухудшается динамика.

Распространенные проблемы ДВС 21129:

• Перегрев. На двигателе установлен не самый надежный термостат.
• Троит. Мотор может троить из-за неисправных свечей, катушек или забившихся форсунок.
• Стук под капотом. На некоторых автомобилях шумят гидрокомпенсаторы, их можно заменить у дилера по гарантии.

В технической документации к автомобилю ресурс ремня ГРМ указан как 180 тыс. км. Но лучше менять его каждые 60 тыс. км. Даже если ремень отслужит указанный срок, чего часто не происходит, то обводной ролик и водяная помпа могут заклинить. А при обрыве ремня ГРМ 21129 гнет клапана.

Какие двигатели лучше? ВАЗ или Renault?

Отечественные моторы превосходят французских предшественников. Машины с двигателями ВАЗ быстрее разгоняются, лучше «тянут» на низких оборотах, тише работают и имеют меньший расход топлива.

Оба устанавливаемых на Lada Largus отечественных мотора являются модификациями старых моделей. Они уже прошли проверку временем и доказали свою конкурентоспособность. Благодаря удешевлению моторов, АвтоВАЗ дополнил комплектации автомобилей – добавились атермальные стекла, улучшенный вакуумный усилитель тормозов, изменился механизм стеклоочистителя, появились дополнительные датчики и др. Автомобиль стал комфортнее, а цена осталась прежней.

У ВАЗ 11189 и 21129 есть важное преимущество. Запчасти к ним дешевле, чем к французским моторам. Все устанавливаемые на Ларгус ДВС нуждаются в тщательном обслуживании и контроле, но езда на машине с отечественным двигателем обходится дешевле.

Чтобы цена на запчасти и обслуживание стала еще дешевле, заказывайте их в Ларгус-Шоп с бесплатной доставкой. Мы регулярно проводим акции и дарим скидки постоянным клиентам.

АВТОВАЗ начал производство 106-сильного мотора. Кто получит его первым?

На АВТОВАЗе стартовало производство модернизированной версии двигателя ВАЗ-21126, который прибавил в своём индексе единичку и стал 127-ым. Про то, что мощность мотора увеличилась до 106 л.с., знают наверняка все. Говорят, что возрос крутящий момент, но ресурс и расход топлива остались на прежнем уровне.

Новая «Калина» — первый претендент на новый двигатель

О новом двигателе корреспонденту Службы информации ВАЗ-ТВ рассказал директор механосборочного производства ОАО «АВТОВАЗ» Владимир Бокк. По его словам, инженерам удалось «значительно улучшить его характеристики». Судите сами: максимальный (!) крутящий момент возрос со 145 до 148 Нм, на низких оборотах он вырос примерно на 10%.

А вдруг первой станет «Приора», на которой агрегат и проходил «обкатку»?

Немногим ранее о деталях модернизации 126-го «движка» говорил начальник управления проектирования и доводки силового агрегата АВТОВАЗа Олег Храмков: «Новый двигатель более «эластичен» и тяговит, более приспособлен к городскому режиму. Самое большое отличие — это новая система впуска. Мы добавили новый резонансный объём: специальные системы заслонок на определённых режимах его включают и выключают. По сути, это система инерционного наддува. На разных режимах работает разная резонансная частота, обеспечивая большую дозарядку цилиндров. Контроллер получил новые калибровки. В результате модернизации силового агрегата появилось около двух десятков оригинальных деталей, в том числе датчик абсолютного давления, который применён вместо датчика массового расхода воздуха». 

Мы должны рассматривать все варианты… «Ларгуса» нет, потому что B0 и французы с самого начала не хотели ставить на универсалы вазовские моторы

Владимир Бокк сделал акцент на возросшей с 98 до 106 л.с. мощности двигателя, сказав, что это хорошо скажется на состыковке мотора с автоматической коробкой передач. Цифр расхода топлива пока не озвучивают, как и других деталей относительно модернизированного силового агрегата. В сюжете ВАЗ-ТВ говорят, что «уже в мае новые двигатели будут устанавливаться на некоторые модели Lada, а к июню новым силовым агрегатом обзаведутся Lada Priora, Lada Granta и Lada Kalina». Впору объявлять викторину: какая модель первой получит ВАЗ-21127, если эта тройка претендентов обзаведётся им только к июню? Возможно, имела место оговорка и первой 106 единиц мощности получит Lada Kalina.

Мы обратились в пресс-центр с просьбой прокомментировать ситуацию. Судя по всему, там не считают запуск производства обновлённого двигателя большим событием, хотя мы уверены, что разработку под именем ВАЗ-21127 не раз назовут новой. Итак, в пресс-службе предприятия нам посоветовали дождаться 16 мая, дня, когда состоится запуск серийного производства новой «Калины». Покорно ждём.

Двигатель ВАЗ 21129 106Л.С. 1,6Л

В данной статье поговорим о моторе 21129, который пришел на смену «Приоровскому» 21126 мотору, поговорим о его отличиях от предшественника, болячках. Данный мотор устанавливается на Грантах, Калинах, Приорах. Веста так же получит данный мотор, причем уже с первой партии. 129 мотор — это тот же 127, но с другой прошивкой, чтобы соответствовать нормам токсичности Евро-5, тем самым получить возможность реализации Вест в Европе.

Мотор «21129»

Начало производства данных двигателей началось в 2013 году и ведется по наши дни. Основная начинка осталась от 21126 мотора: тот же чугунный рядный 4 цилиндровый блок, с тем же объемом 1596 см. куб, с теми же 16 клапанами и ходом поршня 75,6мм.  Изменились только выдаваемые характеристики за счет нового ресивера с изменяемой геометрией:

Технические характеристики

Мощность мотора 21129(127) – 106л.с. (21126 – 98л.с.)

Крутящий момент 21129(127) – 150Н.м (21126 – 145 Н.м.) на 4000 оборотах.

Смешанный расход топлива – 7-10 л на 100км. Более подробно о расходе топлива

Рекомендуемое топливо – АИ 95

Вес мотора – 115 кг.

Выше на таблице представлен моментный и мощностной график мотора 1,6л 21129 и его сравнение с мотором 21179 1,8л.

Масло

Масло в данном двигателе применяется аналогичное 21126: синтетика, полусинтетика

5W-30
5W-40
10W-40
15W40

Объем масляного картера

Этот момент будет полезен тем, кто собирается менять масло в двигателе. С разной трансмиссией, объем заливаемого масла в двигатель так же разный.

ВАЗ 21129 + мкпп рено (литой картер)  = 4,4л

ваз 21129 + робот (штампованный кратер)= 3,2л

Ресурс двигателя составляет 200км. Но на практике, нужно следить за состоянием роликом, помпы и ремня ГРМ, поскольку при заклинивании отдельных элементов клапана встретятся с поршневой группой, и тогда тем и другим придет конец. Помимо того, во время удара этих элементов, не редко встречается, что чуть гнется коленвал. Ездить с таким коленвалом можно, но будет огромный расход масла.

Особенности 21129 двигателя/ отличия

Главной особенностью 129 мотора является «инновационная» для АвтоВАЗа установка впускного ресивера с изменяемой геометрией и объемом камерой. За счет заслонки в зависимости от оборотов изменяется объем впускной камеры. Как показывает практика, заслонка срабатывает на 3500 оборотах двигателя.

К тому же инженерам удалось избавиться от ДМРВ – датчика массового расхода воздуха. Вместе с ним ушли и его болячки, который замучили владельце 21126 мотора: нестабильный холостой ход, порой непомерный расход, дороговизна.  Вместо ДМРВ инженеры установили связь из датчиков ДАД и ДТВ (датчики атмосферного давления и температуры воздуха). На этом отличия от 126 мотора заканчиваются. Говоря по факту, впускная система с изменяемой геометрией стара как мир и устанавливается у мировых производителей чуть ли не с 80-х годов.

Отличия 21129 от 21126 (Компоновка навесного, переход с ДМРВ на ДАД+ДТВ, наличие впускного ресивера с изменяемой геометрией.

Отличия 21129 от 21127 (Иная компоновка, другая прошивка)

Ощущения от двигателя

Мотор стал лучше ехать с низких оборотов, и не терять полку момента на верхах, как это было на 126 моторе. По факту, изменения в динамике не значительные, что и говорят технические характеристики, но ощутимые.

На данный момент 129 мотор идет в паре с механической коробкой передач или же с отечественный роботом (АМТ).

Тюнинг двигателя 21129

Тюнинг двигателя 21129 ничем не отличается от 126 мотора.

Легкий тюнинг: прошивка Евро-2 или же Евро-2 + установка выхлопа 4-2-1

Средний тюнинг: Выхлоп 4-2-1 + Валы +  прошивка (желательно прошить онлайн)

Глубокий: включает доработку головы, замены клапанов, толкателей и т.д.  Все технические характеристики Весты.

Другие двигатели:

Дизельный двигатель Caterpillar C175-20 — по номерам

Дизельный двигатель Caterpillar C175-20 имеет высоту более 8 футов и способен развивать крутящий момент 16 474 фунт-фут. 20-цилиндровый мамонт используется для питания гигантского карьерного самосвала Cat 797F с грузоподъемностью 400 тонн, но когда он подключен к генератору, он может вырабатывать до 4 мегаватт электроэнергии. По данным федерального правительства, этой мощности достаточно для управления более чем 350 средними американскими домами.Фактически, один двигатель C175-20 приводит в движение весь остров Мюстик в Карибском море.

C175-20 — это четырехтактный двигатель объемом 105,8 л с водяным охлаждением, работающий на биодизельном топливе, с четырьмя турбонагнетателями и системой впрыска Common Rail компании Caterpillar ACERT, которая помогает снизить расход топлива и сократить время восстановления, а также улучшает запуск в холодную погоду. Погода. С присоединенным оборудованием для выработки электроэнергии он весит 51588 фунтов и имеет размеры 21,8 фута в длину и 7,6 фута в ширину. Двигатель — моноблок из чугуна; коленчатый вал стальной кованый; две форсунки охлаждения поршней на цилиндр; и высокие четырехклапанные (всего 80) головки цилиндров с перекрестным потоком и большими портами. Большой рабочий объем в 6456 кубических дюймов и низкая рабочая скорость 1800 об / мин предназначены для обеспечения надежной работы двигателя.

В конструкции двигателя используются длинные 8,66-дюймовые рабочие ходы для оптимальной эффективности. C175-20 имеет большой объем масла (178,3 галлона) и клапан регулировки давления, который помогает поддерживать оптимальное давление масла при всех оборотах двигателя и любых нагрузках. Скорость впуска составляет гигантские 11 946 кубических футов в минуту, а максимальная температура выхлопных газов составляет довольно прохладные 894 градуса, когда «генераторная установка» работает на максимальной мощности.Двигатель C175 также доступен в 16-цилиндровой конфигурации, которая используется для всего, от запуска буровых установок на морских нефтяных вышках до привода локомотивов.

Конфигурации генератора

Генераторная установка C175-20 доступна в различных конфигурациях для различных целей, от постоянной выходной мощности до работы в качестве аварийного резервного питания.

Standby: Выход доступен с переменной нагрузкой на время прерывания нормального источника питания.Средняя выходная мощность составляет 70 процентов от номинальной мощности в режиме ожидания. Типичная работа составляет 200 часов в год, при максимальном ожидаемом использовании 500 часов в год.

Критическое значение: Выходной сигнал доступен с переменной нагрузкой на время прерывания нормального источника питания. Средняя выходная мощность составляет 85 процентов от номинальной критически важной мощности. Типичное пиковое потребление составляет до 100 процентов критически важной номинальной электрической мощности в течение 5 процентов рабочего времени. Типичная работа составляет 200 часов в год, при максимальном ожидаемом использовании 500 часов в год.

Prime: Выход доступен с переменной нагрузкой в ​​течение неограниченного времени. Средняя выходная мощность составляет 70 процентов от номинальной мощности. Типичное пиковое потребление составляет 100 процентов от номинальной электрической мощности с 10-процентной перегрузочной способностью для аварийного использования в течение максимум 1 часа из 12. Работа с перегрузкой не может превышать 25 часов в год.

Непрерывный: Выход доступен с неизменной нагрузкой в ​​течение неограниченного времени. Средняя выходная мощность составляет от 70 до 100 процентов от номинальной продолжительной мощности.Типичная пиковая нагрузка составляет 100 процентов от номинальной мощности в непрерывном режиме в течение 100 процентов рабочих часов.

Caterpillar C175-20 Генератор 60 Гц — критически важная конфигурация
Технические характеристики
Тип двигателя:	Четырехтактный дизельный двигатель с водяным охлаждением
Рабочий объем:	105. 8L / 6,456ci
Компоновка двигателя:	V-20
Материал блока:	Чугун
Клапанный механизм:	OHV четыре клапана на цилиндр (всего 80)
Диаметр цилиндра:	6.89 дюймов
Ход:	8,66 дюйма
Степень сжатия:	15,3: 1
Индукция:	Четыре параллельных турбокомпрессора
Обработка воздуха:	Воздухо-водяной промежуточный охладитель
Расход воздуха на впуске:	11 946 кубических футов / мин
Заправка топливом:	Common Rail
Мощность:	4000 л.с. при 1800 об / мин
Крутящий момент:	16474 фунт-фут при 1800 об / мин
Мощность в режиме ожидания:	4 мегаватта
Напряжение:	12470 вольт
Частота:	60 Гц
Скорость работы двигателя: 900 35	1800 об / мин
Макс. Расход топлива:	274,4 галлона / час
Температура трубы выхлопных газов:	894 градуса
Объем масла:	178,3 галлона
Размеры
Длина:	261,5 дюйма
Ширина:	92,0 дюйма
Высота :	100,6 дюймов
Вес:	51588 фунтов
Выбросы
NOX:	5.27 г / л.с.-час
CO:	0,5 г / л.с.-час
HC:	0,18 г / л.с.-час
PM:	0,04 г / л.с.-час

% PDF-1.4
%
196 0 объект
>
эндобдж
197 0 объект
> поток
DOI: 10. 1073 / pnas.1524720113application / pdf10.1073 / pnas.1524720113 http://dx.doi.org/10.1073/pnas.15247201132016-05-12false10.1073/pnas.1524720113

10.1073 / pnas.15247201132016-05-12false

2021-06-09T17: 45: 56-07: 002021-06-09T17: 45: 56-07: 002016-05-12T05: 39: 51 + 05: 30Arbortext Advanced Print Publisher 9.1.510 / W UnicodeAcrobat Distiller 10.0.0 (Windows) uuid: 25c9c9e4-1dd2-11b2-0a00-290a276d7200uuid: 25c9c9e9-1dd2-11b2-0a00-b80000000000
конечный поток
эндобдж
101 0 объект
>
эндобдж
6 0 obj
>
эндобдж
56 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 73 0 R / Type / Page >>
эндобдж
57 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 25 0 R / Type / Page >>
эндобдж
58 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 33 0 R / Type / Page >>
эндобдж
59 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 242 0 R / Type / Page >>
эндобдж
60 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 178 0 R / Type / Page >>
эндобдж
5 0 obj
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 7 0 R / Type / Page >>
эндобдж
61 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / Properties> / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 50 0 R / Type / Page >>
эндобдж
62 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 66 0 R / Type / Page >>
эндобдж
63 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text / ImageC] / XObject >>> / Rotate 0 / Thumb 213 0 R / Type / Page >>
эндобдж
277 0 объект
> поток
HW َ H | # 身 8oǺcłM-% QCR̢U, ֑ F mj) F9 * _. k / ‘ѵTh4 (fE2 \ N> @rDjqdw [bg9J.oh_I]] UqsV |>

(PDF) Сигнатуры FRET невзаимодействующих белков в мембранах: моделирование и эксперименты

тетрамеров, и мы проверяем этот подход, измеряя

близость FRET для мономерных мембранных белков в

везикулах, происходящих из плазматической мембраны.Предсказания, которые мы представляем здесь

, могут быть использованы для корректировки измеренной эффективности

FRET, когда флуоресцентные белки используются в

экспериментах с FRET в стационарном состоянии, такие, что эффективности

не содержат вкладов из-за неспецифических взаимодействий.

Вычислительные инструменты, описанные в этой статье, развивают методологии на основе

FRET, используемые для изучения взаимодействий

между мембранными белками. Поскольку действия мембранных белков

лежат в основе многих важных клеточных процессов, эти инструменты

должны иметь широкое применение в исследованиях мембранных белков

.

ДОПОЛНИТЕЛЬНЫЙ МАТЕРИАЛ

Пять рисунков доступны по адресу http://www.biophysj.org/biophysj/

Supplemental / S0006-3495 (14) 00141-6.

Мы благодарим доктора Муса Мохаммади за плазмиду FGFR1.

Эта работа была поддержана грантами Национальных институтов здравоохранения GM095930

, выданным K.H. и GM099321, выданный D.L., и Национальным научным фондом

Graduate Research Fellowship (DGE-1232825) C.K.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Schlessinger, J. 2000. Передача клеточных сигналов с помощью рецепторных тирозинкиназ. Клетка.

103: 211–225.

2. Он, Л., и К. Христовы. 2012. Физико-химические принципы, лежащие в основе активации

RTK, и их значение для болезней человека.Биохим.

Biophys. Acta. 1818: 995–1005.

3. Леммон М.А. и Дж. Шлессингер. 2010. Передача клеточных сигналов рецептором

тирозинкиназ. Клетка. 141: 1117–1134.

4. Ши, Ю., Б.С. Карон,., Д. Д. Томас. 1996. Зависимые от фосфоламбана эффекты

C

12

E

8

на транспорт кальция и молекулярную динамику в

сердечном саркоплазматическом ретикулуме. Биохимия. 35: 13393–13399.

5. Янг, Х.С., Л. Р. Джонс и Д. Л. Стокс. 2001. Обнаружение фосфо-

лямбана в сокристаллах с Са

2þ

-АТФаза с помощью криоэлектронной микроскопии.

Biophys. J. 81: 884–894.

6. Кенуорти, А. К., и М. Эдидин. 1998. Распределение гликозил-

-фосфатидилинозитола-заякоренного белка на апикальной поверхности клеток MDCK

, исследованных с разрешением <100 A

с использованием визуализации флуоресценции

резонансный перенос энергии.J. Cell Biol. 142: 69–84.

7. Кенуорти, А. К., Н. Петранова, М. Эдидин. 2000. Высокое разрешение

FRET-микроскопия B-субъединицы холерного токсина и GPI-заякоренных белков

в плазматических мембранах клеток. Мол. Биол. Клетка. 11: 1645–1655.

8. Сингх, Д. Р., М. М. Мохаммад,., В. Райку. 2013. Определение

четвертичной структуры бактериального переносчика АТФ-связывающей кассеты (ABC)

в живых клетках. Интегр Биол (Камб). 5: 312–323.

9.Райку В., Стоунман М. Р., Салдин Д. К.. 2009. Определение супрамолекулярной структуры

и пространственного распределения белковых комплексов

в живых клетках. Nat. Фотоника. 3: 107–113.

10. Чен, Х. М., Х. Л. Пуль, 3-й, и С. Р. Икеда. 2007. Оценка сродства взаимодействия белок-

и

белков в живых клетках с использованием количественных измерений резонансного переноса энергии Fo

rster

. J. Biomed. Опт. 12: 054011.

11. Fo

Эрстер, Т.1948. Межмолекулярная миграция энергии и флуоресценция.

Ann. Phys. 2: 55–75.

12. Шанер, Н. К., П. А. Стейнбах, Р. Ю. Цзянь. 2005. Руководство по выбору флуоресцентных белков

. Nat. Методы. 2: 905–909.

13. Риццо, М. А., Г. Х. Спрингер,., Д. В. Поршень. 2004. Улучшенный вариант цианфлуоресцентного белка

, полезный для FRET. Nat. Biotechnol.

22: 445–449.

14. Piston, D. W., and G. J. Kremers. 2007. Флуоресцентный белок FRET:

хорошее, плохое и уродливое. Trends Biochem. Sci. 32: 407–414.

15. Вольбер П. К. и Б. С. Хадсон. 1979. Аналитическое решение задачи передачи энергии

Fo

Эрстера в двух измерениях. Биофиз. J.

28: 197–210.

16. Уимли, У. К. и С. Х. Уайт. 2000. Определение топологии мембраны

пептидов методом тушения флуоресценции. Биохимия.

39: 161–170.

17. Посохов Ю. О., Мерзляков М., Ладохин А. С.. 2008. Простая поправка

на «близость» для определения эффективности передачи энергии Fo

Эрстера

в мембранах с использованием измерений срока службы.Анальный.

Biochem. 380: 134–136.

18. Ю М., Ли Э., Христова К. 2005. Fo

Эрстеровский резонансный перенос энергии

в липосомах: измерения димеризации трансмембранной спирали в

естественной двухслойной среде. Анальный. Biochem. 340: 154–164.

19. Снайдер Б. и Э. Фрейре. 1982. Перенос энергии флуоресценции в двух измерениях

. Числовое решение для случайных и неслучайных распределений —

делений. Биофиз. J. 40: 137–148.

20. Фрейре, Э. и Б. Снайдер. 1982. Количественная характеристика латерального распределения

и

мембранных белков в липидном бислое.

Biophys. J. 37: 617–624.

21. Li, E., J. Placone,., K. Hristova. 2008. Количественные измерения

взаимодействий

белков в переполненной клеточной среде. Анальный. Chem.

80: 5976–5985.

22. Чен, Л., Л. Новицки,., К. Христова. 2010. Измерение энергии

димеризации мембранных белков в мембранах млекопитающих.Варенье.

Chem. Soc. 132: 3628–3635.

23. Скотт Р. Е. 1976. Везикуляция плазматической мембраны: новый метод выделения

плазматических мембран. Наука. 194: 743–745.

24. Del Piccolo, N., J. Placone,., K. Hristova. 2012. Производство

везикул плазматической мембраны с хлоридными солями и их использование в качестве миметика

клеточной мембраны для биофизической характеристики мембранных взаимодействий

белков. Анальный. Chem. 84: 8650–8655.

25. Сарабипур, С., и К. Христова. 2013. Димеризация трансмембранного домена

гликофорина А в везикулах плазматической мембраны, происходящих из клеток CHO,

HEK 293T и A431. Биохим. Биофиз. Acta. 1828: 1829–1833.

26. Сарабипур С., К. Кинг и К. Христова. 2013. Неиндуцированная бактериальная экспрессия флуоресцентных белков с высоким выходом

. Анальный. Biochem.

449C: 155–157.

27. Плаконе Дж. И К. Христова. 2012. Прямая оценка эффекта

мутации ахондроплазии Gly380Arg на димеризацию FGFR3 с использованием количественной визуализации FRET

.PLoS ONE. 7: e46678.

28. Сарабипур, С., и К. Христова. 2013. Взаимодействия трансмембранного домена FGFR3

сохраняются в присутствии его внеклеточного домена.

Biophys. J. 105: 165–171.

29. Боуи, Дж. У. 2011. Сворачивание мембранного белка: насколько важны

водородных связей? Curr. Opin. Struct. Биол. 21: 42–49.

30. Уимли, У. К. и С. Х. Уайт. 2000. Создание трансмембранных

а-спиралей, которые самопроизвольно вставляются. Биохимия.39: 4432–4442.

31. Ким М., К. В. Карман и Т. А. Спрингер. 2003. Двунаправленная передача сигналов через мембрану транс-

посредством разделения цитоплазматических доменов в интегринах.

Наука. 301: 1720–1725.

32. Кенуорти А. К. 2001. Визуализация белок-белковых взаимодействий с использованием флуоресцентной микроскопии с резонансным переносом энергии

. Методы.

24: 289–296.

33. Chen, L., J. Placone,., K. Hristova. 2010. Внеклеточный домен рецептора 3 фактора роста фибробластов

ингибирует лиганд-независимую димер-

илизацию.Sci. Сигнал. 3: ra86.

34. Русс, У. П., и Д. М. Энгельман. 1999. TOXCAT: мера ассоциации транс-

спирали мембраны в биологической мембране. Proc. Natl.

Акад. Sci. США. 96: 863–868.

Biophysical Journal 106 (6) 1309–1317

1316 King et al.

Структурные сборки ди- и олигомерного рецептора TGR5, сопряженного с G-белком, в живых клетках: исследование MFIS-FRET и интегративного моделирования

TGR5 образует гомокомплексы, но сродство к комплексу различается между вариантами TGR5

Чтобы охарактеризовать комплексообразование Из TGR5 мы использовали три варианта TGR5: TGR5 wt, TGR5 Y111A и TGR5 Y111F.Остаток тирозина в положении 111 является частью высококонсервативного мотива ERY, который важен для функции GPCR ³⁰ и, по прогнозам, фосфорилируется EGFR с использованием NetPhos ³¹ .

Иммунофлуоресцентное окрашивание в клетках MDCK и HEK293, а также анализ FACS трансфицированных клеток HEK293 продемонстрировали, что все варианты TGR5 правильно локализовались на плазматической мембране примерно в 92% трансфицированных клеток (рис. 1a, b). Кроме того, реактивность TGR5 по отношению к TLC была исследована с использованием анализа цАМФ-зависимой люциферазы ⁹ , где активность люциферазы служила мерой для второго мессенджера цАМФ после активации TGR5. Форсколин (F) повышает цАМФ независимо от TGR5, и его использовали в качестве положительного контроля. Стимуляция TGR5 wt, TGR5 Y111A или TGR5 Y111F с помощью TLC приводила к значительному дозозависимому увеличению активности люциферазы во всех трех случаях (рис. 1c).

Рисунок 1

Локализация и функциональный анализ вариантов TGR5 wt и Y111.

( a ) Локализация TGR5 с помощью конфокальной лазерной сканирующей микроскопии. Клетки MDCK (верхние панели) временно трансфицировали конструкциями FLAG-TGR5-YFP.YFP-флуоресценция была обнаружена в плазматической мембране для TGR5 wt, а также для вариантов TGR5 Y111A и TGR5 Y111F. Клетки HEK293 (нижние панели) временно трансфицировали конструкциями TGR5-pcDNA. TGR5 окрашивали с использованием антитела RVLR2 (красным). TGR5, а также варианты TGR5 Y111A и TGR5 Y111F присутствовали в плазматической мембране. Ядра окрашивали Hoechst (синий). Штанги = 10 мкм. ( b ) Относительная количественная оценка локализации плазматической мембраны TGR5 с использованием проточной цитометрии. Количество FLAG-TGR5-YFP в плазматической мембране соответствует количеству положительной маркировки FLAG-тегом (= внеклеточная маркировка), деленному на общее количество YFP-флуоресценции. TGR5 Y111A и TGR5 Y111F были обнаружены на клеточной поверхности у 92,7% и 91,5% трансфицированных клеток, что было аналогично TGR5 wt с 91,2% (n = 3 независимых эксперимента по трансфекции). ( c ) Активность рецептора TGR5 определяли с использованием анализа на цАМФ-чувствительную люциферазу. Клетки HEK293 котрансфицировали TGR5 (pcDNA3.1+), репортерная конструкция люциферазы, реагирующая на цАМФ, и вектор экспрессии Renilla. Люциферазная активность служила мерой повышения внутриклеточного цАМФ после активации TGR5. Форсколин (F, 10 мкМ) использовали в качестве TGR5-независимого положительного контроля. TGR5 Y111A и TGR5 Y111F не влияли на чувствительность рецептора к тавролитохолату желчной кислоты (TLC). Результаты (wT n = 8; TGR5 Y111A n = 9; TGR5 Y111F n = 6) выражены как среднее значение + SEM. ^# Значительно отличается ( p ≤ 0.01) из ДМСО (со = контроль).

Чтобы проанализировать взаимодействие между белками TGR5 wt или TGR5 wt с TGR5 Y111A, мы провели эксперименты по коиммунопреципитации (Co-IP). Меченные His белки TGR5 wt и либо TGR5 wt-YFP, либо TGR5 Y111A-YFP экспрессировались в клетках HEK293. Иммунопреципитацию His-меченного TGR5 wt проводили с помощью антитела против His. Взаимодействие белков TGR5 визуализировали с помощью антитела против GFP, которое распознало C-концевой YFP TGR5 (фиг. 2а, дорожка 3). Co-IP четко показал, что TGR5 образует гомокомплексы.По сравнению с взаимодействием между белками TGR5 wt, взаимодействие между TGR5 wt и TGR5 Y111A значительно снижается примерно на 40%, как измерено денситометрией (рис. 2b).

Рисунок 2

Обнаружение мультимеризации TGR5 путем коиммунопреципитации.

Клетки

( a ) HEK293 временно трансфицировали pcDNA3.1 и TGR5-YFP, TGR5-His и pEYFP, TGR5-His и TGR5-YFP или TGR5-His и TGR5 Y111A-YFP. Иммунопреципитацию (IP) проводили с использованием антитела против His.Равные объемы осадка дегликозилировали N-гликозидазой-F, разделяли с помощью SDS-PAGE и наносили на мембраны PVDF. Для вестерн-блоттинга (WB) использовали первичные антитела, связанные с пероксидазой хрена, против His и GFP. TGR5-YFP осаждали совместно с TGR5-His. Мутация тирозина 111 в аланин в TGR5-YFP снижает количество соосажденного варианта рецептора. Лизаты клеток (50 мкг общих лизатов белков служили входными контролями и разделялись с помощью SDS-PAGE, и белки наносили на мембраны из PVDF.WB проводили с первичными антителами, связанными с пероксидазой хрена, против His и GFP или антителами против глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназы (GAPDH). ( b ) Денситометрический анализ Вестерн-блоттинга против GFP и против His. Относительное взаимодействие TGR5-TGR5 ​​определяли как относительное отношение GFP к уровням His. Результаты выражены как среднее значение + стандартная ошибка среднего (n = 4), * Значительно отличается от взаимодействия wt-His / wt-YFP, p < 0,05 .

Пиксельный анализ MFIS-FRET демонстрирует заметные различия в свойствах FRET между вариантами TGR5

Для дальнейшего анализа различий в образовании комплексов, обнаруженных с помощью Co-IP, мы использовали генетически кодируемые флуоресцентные белки GFP и mCherry, прикрепленные к С-концу TGR5 для измерения FRET с помощью MFIS-FRET в живых клетках.GFP и mCherry обычно используются как пара FRET с радиусом Ферстера R ₀ = 52 Å ³² . Как показано на фиг. 3a и SI на фиг. 1a, все варианты TGR5-GFP и TGR5-mCherry (wt, Y111A и Y111F) сильно локализованы на клеточной мембране клеток HEK293. Чтобы визуализировать неоднородность внутри и между клетками, изображения MFIS-FRET были точно проанализированы по пикселям для вычисления всех соответствующих параметров флуоресценции. Во время этой процедуры фотоны выбираются по пикселям, группируются в соответствии с их свойствами и выборочно интегрируются для уменьшения шума (см. Методы SI).Для прямого доказательства FRET необходимо показать, что наблюдаемые изменения сигнала связаны с различиями в эффективности FRET E , а не с локальными изменениями свойств флуорофора или артефактами трансфекции. Таким образом, необходимо анализировать оба показателя FRET: (i) вызванное FRET тушение донора из-за присутствия акцептора и (ii) возникновение FRET-сенсибилизированной акцепторной флуоресценции ³³ .

Рисунок 3

Обнаружение мультимеризации TGR5 с помощью пиксельного анализа MFIS-FRET.

( a ) клеток HEK293, временно трансфицированных TGR5-GFP и TGR5-mCherry (коэффициент трансфекции 1:10), были отображены для совместной локализации GFP и mCherry с использованием последовательного сканирования и разрешения сканирования 1024 × 1024 пикселей. . Каждое изображение TGR5-GFP и TGR5-mCherry показано в режиме насыщенности ложных цветов, а затем наложено с использованием зеленого и желтого цветов интенсивности. TGR5 wt-GFP и TGR5 wt-mCherry явно совместно локализуются на клеточной мембране. Шкала 10 мкм. Варианты TGR5 Y111 показаны на SI Рис.1. ( b ) MFIS-анализ клеток HEK293, трансфицированных TGR5 wt-GFP, путем сравнения (слева направо) интенсивности сигнала донорного GFP ( S _{G, G} ), интенсивности сигнала акцептора mCherry ( S _{Y, Y} ), обнаружение желтых фотонов mCherry после возбуждения GFP ( S _{Y, G} , S : сигнал, Y : желтое излучение, G : зеленое возбуждение) в результате FRET, и изменения времени жизни донорной флуоресценции 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f . Для TGR5 wt-GFP обнаруживается только сигнал донора, но не сигнал акцептора. Анализ MFIS вариантов TGR5 Y111 показан на SI Рис. 1. ( c ) Те же параметры были использованы для образцов TGR5 GFP / mCherry. Измерения MFIS показывают FRET ( S _{Y, G} и изменения в 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f ) во всех вариантах TGR5, что указывает как минимум на гомосексуальность. -димеризация.

Выбор этих соответствующих индикаторов FRET отображается на изображениях эталонного образца только для доноров TGR5 wt (рис.3b) и образец FRET (рис. 3c, первая строка): интенсивность сигнала S донорного GFP в зеленом канале обнаружения при возбуждении донора ( S _{em, ex} = S _{G , G} ; λ _ex = 488 нм), интенсивность сигнала непосредственно возбужденного акцептора mCherry в желтом канале детектирования S _{Y, Y} (λ _ex = 559 нм), а также результат FRET сенсибилизированного FRET сигнала mCherry S _{Y, G} . Кроме того, о тушении донора FRET судят путем сравнения средневзвешенных по флуоресценции времени жизни донора в отсутствие 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f и наличия акцептора 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f соответственно. Если FRET не происходит, мы ожидаем сигналов только в зеленом канале. Это действительно наблюдается для эталонного измерения TGR5-GFP (рис. 3b).Кроме того, 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f , как и ожидалось, не изменится.

По сравнению с клетками, трансфицированными только донорским эталоном TGR5-GFP (рис. 3b), измерения MFIS-FRET образца FRET предполагают присутствие FRET, поскольку сигнал акцептора, сенсибилизированного FRET, был обнаружен (рис. 3c, S _{Y, изображение G} ) и 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f (рис. 3c, изображение за время жизни) явно уменьшено по сравнению с 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f . Такие же наблюдения были сделаны также для вариантов TGR5 Y111A и Y111F (Рис. 3c и SI Рис. 1b).

Коррелированное изменение обоих FRET-индикаторов, специфичное для FRET, лучше всего визуализируется на 2D-гистограмме, отображающей соотношение скорректированных интенсивностей флуоресценции донора и акцептора ( F _D / F _A ) (SI Таблица S1) в зависимости от времени жизни донорной флуоресценции (〈τ _D 〉 _f ), где цветовая шкала соответствует частоте пикселей, причем черный цвет является максимальным (рис.4а). Коррелированный сдвиг обоих индикаторов доказывает молекулярную близость мономеров TGR5 wt и TGR5 Y111A / F, предполагая наличие по крайней мере гомодимеров. Чтобы изучить, образуются ли также олигомеры более высокого порядка, мы провели эксперименты по акцепторному титрованию с различными уровнями трансфекции от донора к акцептору, что привело к ожидаемой 40-кратной концентрации акцептора на последней стадии титрования. Здесь индикаторы FRET ( F _D / F _A ) и 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f позволяют качественно интерпретация измерений без применения конкретной модели.FRET определяет локальную близость партнеров по связыванию в пределах ~ 80 Å. Следовательно, если существуют небольшие олигомеры 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f , соотношение интенсивности флуоресценции ( F _D / F

86 A уменьшаются с увеличением концентрации акцептора, тогда как они не меняются, если существуют только димеры. Для TGR5 wt и TGR5 Y111F 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f значительно уменьшилось на 17% и 14% соответственно, тогда как для TGR5 Y111A 〈 τ _{D ( A )} 〉 _f уменьшено всего на 7%.Это поведение также обнаруживается в отношениях интенсивностей флуоресценции F _D / F _A . Здесь значительные изменения FRET, зависящие от уровня трансфекции, обнаруживаются для TGR5 wt и TGR5 Y111F, тогда как только незначительные изменения обнаруживаются для TGR5 Y111A (рис. 4a). Коррелированный сдвиг обоих индикаторов FRET подтверждает, что изменения FRET действительно вызваны разными концентрациями. Это предполагает значительное образование олигомеров TGR5 wt и TGR5 Y111F, но отсутствие или только небольшое количество олигомеров для TGR5 Y111A.Мы наблюдали отличительные свойства TGR5 Y111A также по флуоресцентным свойствам слитого GFP, который всегда измерялся как эталонный образец только для донора в экспериментах FRET. В то время как GFP, слитый с TGR5 wt и TGR5, Y111F имел время жизни флуоресценции 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f = 2,4 нс, 〈 τ _{D86 0587 ()} 〉 _f увеличилось до 2,8 нс в варианте Y111A (SI рис.1б). Помимо сдвига времени жизни, мы обнаружили спектральный сдвиг в красную область на 13 нм в спектре излучения TGR5 Y111A, возбужденного на 488 нм, по сравнению с TGR5 wt (SI рис. 1c).

Рис. 4

Пиксельный анализ свойств TGR5 FRET.

( a ) Графики MFIS-FRET 2D созданы с помощью Origin 8.6 и показывают наложение двух гистограмм скорректированного отношения интенсивности флуоресценции (фон, перекрестные помехи и спектральный сдвиг) ( F _D / F _A ) vs.〈 τ _{D ( A )} 〉 _f . Доноры TGR5 wt и TGR5 Y111F (отмечены зеленым) показали 〈 τ _{D ( 0 )} 〉 _f = 2,4 нс и высокий сигнал от зеленого к желтому. С увеличением количества акцептора mCherry (оранжевые и красные островки) оба параметра сильно уменьшались в TGR5 wt и TGR Y111F, но не в TGR5 Y111A. Все образцы были скорректированы на относительную яркость, относительное прямое возбуждение mCherry в зеленом канале обнаружения, спектральный сдвиг варианта Y111A и фон в зеленом и желтом каналах (см. Методы 5. 10 уравнения 2 и 3). ( b ) FRET-индуцированное тушение донора ε ( t ), полученное на основе измерений флуоресценции суб-ансамбля на вариантах TGR5 при различных соотношениях донор-акцептор. По оси времени измеряется время между возбуждением и детектированием донорных фотонов. В верхнем ряду показаны экспериментальные данные. В нижней строке вычитается смещение (фракция без FRET), и результат обозначается как ε _FRET ( t ). В TGR5 wt и TGR5 Y111F, FRET явно увеличивался в зависимости от mCherry, тогда как в TGR5 Y111A все кривые ε _FRET ( t ) вели себя аналогично.( c ) FRET-распады из суб-ансамблевого анализа при различных соотношениях донор-акцептор (D / A) были подобраны с помощью двух подходов: k _FRET для получения двух видимых расстояний R _{DA, 1} и R _{DA, 2} (верхний ряд) с соответствующими фракциями FRET (нижний ряд) и для расчета средней эффективности E _{среднее значение} . E _{означает, что} увеличилось акцепторно-зависимым образом в TGR5 wt и TGR5 Y111F, тогда как E _{означает} изменилось лишь незначительно в TGR5 Y111A.Эти изменения в E _{среднее} коррелируют с уменьшением обоих видимых расстояний R _{DA, 1} и R _{DA, 2} в TGR5 wt и TGR5 Y111F: в нижнем В ряду фракции R _{DA, 1} увеличиваются, тогда как фракции R _{DA, 2} уменьшаются акцепторно-зависимым образом. Оранжевый: R _{DA, 1} и R _{DA, 1} фракция, розовый: R _{DA, 2} и R _{DA, 2} фракция зеленый: фракция без FRET, серая полоса в E _{среднее значение} представляет среднее значение E _{среднее значение} для TGR5 Y111A.

TGR5 wt и TGR5 Y111F образуют олигомеры более высокого порядка, тогда как TGR5 Y111A в основном образует димеры

Пиксельный анализ данных флуоресценции по среднему времени жизни флуоресценции 〈 τ _D 〉 _{905 905} и отношения интенсивностей флуоресценции ( F _D / F _A ) не позволяют нам определить несколько видов, потому что информация, содержащаяся в записанных затуханиях флуоресценции, сокращается до двух чисел. Следовательно, неоднородности образца, которые естественным образом возникают при визуализации, не могут быть устранены. Чтобы преодолеть это ограничение, затухание флуоресценции анализируется непосредственно с помощью пиксельно-интегрированного анализа с высокой точностью. Здесь сравниваются две кривые затухания флуоресценции f ( t ): затухание образца FRET f _{D ( A )} ( t ) и распад только донорной ссылки f _{D ( 0 )} ( t ) (рис.4б). Это сравнение удобно проводить, вычисляя индуцированный FRET распад донора с временным разрешением ε ( t ), который определяется соотношением двух распадов f _{D ( A )} ( t ) / f _{D ( 0 )} ( t ), как описано в ур. (1). На вспомогательном рисунке 2 показано, как можно интерпретировать графики ε ( t ). Вызванный FRET распад донора ε ( t ) позволяет визуально идентифицировать популяцию всех видов доноров.Например, виды без FRET вызывают постоянное смещение, а виды FRET вызывают распад. Наклон этого затухания на полулогарифмическом графике, показанном на рис. 4b, обеспечивает измерение константы скорости FRET, которая увеличивается с уменьшением расстояния между донорами и акцепторами. Неэкспоненциальный спад указывает на смесь различных видов FRET, в которых донор и акцептор разделены разными расстояниями. Донор тушится всеми акцепторами в непосредственной близости от него.

На рис. 4b экспериментальные затухания флуоресценции всех вариантов представлены в виде кривых ε ( t ).Хорошо видны различия в постоянном смещении и крутизне спадов. Для лучшего сравнения наклонов только фракция FRET была определена при подборе (уравнение (1), результаты см. В таблице SI S2 и SI на рисунке 2) и отображена на рисунке 4b ( ε _FRET ( t ) кривые). При низком уровне трансфекции от донора к акцептору (DA 1:40) распад имеет две отдельные области: крутой и пологий. Крутой наклон соответствует высокой константе скорости FRET, в то время как пологий наклон соответствует низкой константе скорости FRET.Для TGR5 wt и TGR5 Y111F наклон зависит от коэффициента трансфекции, в то время как для TGR5 Y111A такой зависимости не наблюдается.

Для количественной оценки этих изменений мы формально описываем затухание флуоресценции двумя константами скорости FRET, которые для удобства приведены в единицах видимых расстояний R _{DA, приложение} (уравнение (5) и таблица SI S2, SI Рис.3). Для всех вариантов TGR5 эта подгонка k _FRET привела к небольшому видимому расстоянию R _{DA, app-1} с небольшой долей и большим видимым расстоянием R _{DA, app -2} с крупной дробью.Как показано на рис. 4c, в TGR5 wt и TGR5 Y111F оба видимых расстояния R _{DA, app-1} и R _{DA, app-2} стали короче ( R _{DA , app-1} = 40–20 Å; R _{DA, app-2} = 75–50 Å) с увеличением концентрации акцептора. Кроме того, фракции видов также изменились: фракция коротких расстояний увеличилась с 7% до 30% акцепторно-зависимым образом, что в то же время привело к сильному снижению фракции длинных расстояний с 39% до 12%.Мы количественно оценили это изменение, вычислив среднюю эффективность передачи энергии E _{среднее} (уравнение (7)) активных частиц FRET, которая заметно увеличилась для TGR5 wt и TGR5 Y111F по сравнению с TGR5 Y111A. Что касается TGR5 wt и TGR5 Y111F, эффективность FRET значительно изменяется с концентрацией акцептора (рис. 4c), в то время как для TGR5 Y111A это не так. Следовательно, концентрация олигомеров для TGR5 Y111A очень мала, так что эти данные лучше всего подходят для изучения структурных особенностей димера.

Следует отметить, что для исключения любых артефактов сверхэкспрессии мы дополнительно рассмотрели близость FRET, используя эксперименты по титрованию. Благодаря чувствительности нашего конфокального микроскопа к одной молекуле, мы могли проводить эксперименты FRET с концентрациями акцепторов ~ 1 мкМ, что соответствует плотности молекул <~ 0,002 молекулы акцептора / нм ² (см. Примечания SI). При этих концентрациях близость FRET незначительна (E <0,1) ³⁴ .

TC лиганд TGR5 не влияет на состояние олигомеризации TGR5

Было показано, что активация лигандами может влиять на олигомеризацию GPCR ¹⁰ .Чтобы определить влияние лиганда на TGR5, мы проверили, влияет ли стимуляция таурохолатом (TC), желчной кислотой, менее цитотоксичной, чем TLC в живых клетках, на олигомеризацию TGR5 wt, TGR5 Y111A и TGR5 Y111F. Был разработан анализ временного ряда, в котором MFIS-FRET измеряли в трех ячейках до, сразу после, а также через 10 и 20 минут после добавления 10 мкМ водорастворимого TC. Мы контролировали FRET с помощью усредненного по видам времени жизни донорной флуоресценции 〈 τ _{D ( A )} 〉 _x .Как показано на рис. 5, 〈 τ _{D ( A )} 〉 _x не было изменено ни в донорных образцах (TGR5 GFP), ни в образцах FRET (TGR5 GFP / mCherry). Более подробный FRET-анализ экспериментов временных рядов показал, что ни расстояния, ни доли видов заметно не изменились из-за добавления TC (SI рис. 4). Эти результаты показывают, что TC не влияет на состояние олигомеризации вариантов TGR5.

Фиг. 5

Влияние на FRET после обработки TC лигандом TGR5.

Клетки HEK293 временно трансфицировали только TGR5-GFP (Donly, зеленый) или TGR5-GFP и TGR5-mCherry в соотношении D / A 1:10 (DA, красный). Для анализа временных рядов были отобраны три клетки с использованием функции временных кругов Olympus, и измерения MFIS-FRET были выполнены перед добавлением 10 мкМ TC (без), сразу после добавления TC ( t = 0) и через 10 мин. и 20 мин соответственно. Среднее время жизни донорной флуоресценции, усредненное по видам, 〈 τ _D 〉 _x было определено и нанесено на график в зависимости от времени, а также средняя эффективность E _{средняя} , которая была рассчитана на основании данных в SI Рис.4. Каждая точка представляет собой среднее значение девяти ячеек. Для образцов Донли и образцов DA в присутствии агониста TC не наблюдалось изменений срока службы.

Структурное расположение гомо-ди- и олигомерных TGR5

Затем мы проанализировали, какие структурные особенности комплексов TGR5 могут быть извлечены из наблюдаемых параметров FRET. Предыдущие исследования Синдберта и др. . ³⁵ и Калинин и др. . ³⁶ показали, что степень FRET между двумя гибко связанными флуоресцентными зондами может быть точно предсказана путем вычисления распределения расстояний между всеми положениями флуорофора, которые стерически доступны (доступный объем, AV) для данной структурной модели.Поскольку оба слитых флуоресцентных белка имеют гибкие соединяющиеся аминокислотные остатки (SI Таблица 3), создавая большой, широко распределенный структурный ансамбль ³⁷ , компьютерное моделирование, генерирующее распределения зондов, может быть легко применено для изучения сборок TGR5 с помощью FRET.

Моделирование ожидаемых свойств FRET

Структурная модель мономера TGR5, необходимая для моделирования FRET, была сгенерирована путем выполнения моделирования гомологии с несколькими шаблонами на основе семи шаблонных структур связанных GPCR класса A (см. Методы SI «структурные модели димеров TGR5. и тетрамеры »и исх.38). Как показано на рис. 6а, мы создали три возможных модели гомодимеризации с интерфейсами, включающими TM1-TM2-H8 (для удобства сокращенно 1/8 димер), TM4-TM5 (4/5 димер) или TM5-TM6 (5 / 6 димер). Чтобы гарантировать точность, мы сравнили две процедуры для расчета распределений расстояний между положениями флуорофора для моделей TGR5: (i) Явное моделирование линкера на основе явного моделирования пептидного линкера / GFP-MD с последующими расчетами конформационных свободных энергий для взвешивания каждого линкера. Конфигурация GFP в присутствии димера TGR5 и неявного мембранного бислоя (SI рис.5, см. Также методы SI). Ожидается, что этот подход термодинамического ансамбля (TE) будет более точным, чем следующая процедура, но вычисления отнимают много времени. (ii) Моделирование неявного линкера посредством AV-расчетов, взвешенных по распределению гауссовой цепи, так что во внимание принимаются энтропийные эффекты и геометрические факторы с точки зрения эффектов стерического исключения олигомером TGR5 и мембраной (методы SI). AV-подход должен быть откалиброван, чтобы быть точным, но его преимущество состоит в том, что вычисления выполняются очень быстро.

Рисунок 6

Модели гомодимеризации и их распределения по расстояниям.

( a ) Модели гомодимеризации со следующими интерфейсами слева направо: (1/8), (4/5) и (5/6). Спирали мономера TGR5 окрашены в цвет радуги, от TM1 синего до H8 красного. Верхний ряд: мембранный вид моделей интерфейса в карикатурном и схематическом представлении (кружки, обозначающие ТМ). Нижний ряд: цитоплазматический вид моделей интерфейса. Флуоресцентные белки, которые прикреплены к цитоплазматическому H8, представлены в виде звезд, светящихся зеленым для донора (eGFP) и красным для акцептора (mCherry).Сокращение: ЦП = цитоплазма. ( b ) Распределения вероятностей расстояния, рассчитанные с помощью явного (пунктирная линия) и неявного линкера (сплошная линия) для моделей гомодимеризации (1/8) (красный), (4/5) (зеленый) и (5) / 6) (синий). Область без FRET заштрихована серым. ( c ) Позиционное распределение флуоресцентных зондов для интерфейса TGR5 (1/8). Моделирование неявного линкера дает взвешенные AV для обоих флуорофоров, которые перекрываются и создают одну огромную сферу (верхняя панель). Вероятность допустимых положений флуорофора уменьшается с красного, желтого на зеленый, синего на розовый.Явное моделирование линкера дает термодинамический ансамбль (нижняя панель), изображенный как оранжево-синяя и фиолетовая карты объема соответственно. Ансамбли также в значительной степени пересекаются. Более высокая насыщенность означает более высокую занятость позиции флуорофора. Оба метода дали очень похожие результаты.

TE-подход приводит к полусферическому расположению GFP на цитоплазматической стороне, которое центрируется в точке прикрепления спирали 8 TGR5 (SI рис. энергия (SI Рис.5). При приближении GFP к TGR5 из-за энергетически невыгодных контактов обнаруживаются конфигурации с меньшей вероятностью. Распределение расстояний между N-концом линкера и флуорофором GFP, взвешенное по Больцману, показывает расстояние пика около 45 Å, в то время как минимальное расстояние составляет около 35 Å. Это связано с тем, что флуорофор расположен на расстоянии 20 Å от С-конца линкера внутри β-цилиндрической структуры GFP и, таким образом, недоступен для N-конца линкера. Пиковая длина линкера (без учета GFP) составляет около 25 Å.Это примерно на 5 Å больше, чем средний радиус вращения полипептида гауссовой цепи с таким же числом остатков (33 аминокислоты, дающие 3,5 Å * 33 ^0,5 = 20 Å ³⁹ ). Отклонение показывает, что линкер с GFP не совсем похож на «идеальную» гауссову цепь. Для расчетов распределения расстояний между красителями использовалась карта положения флуорофора, взвешенная по Больцману (рис. 6c, SI, рис. 5).

Неявная модель (рис. 6c) была протестирована в качестве альтернативы для учета диффузии красителя-линкера.Подход доступного объема (AV) был использован для оценки всех возможных положений красителя в пределах длины линкера от точки прикрепления без стерических столкновений с макромолекулярными поверхностями. Флуорофоры аппроксимируются сферой с определенным радиусом, который оценивается по физическим размерам молекул (левая панель). Соединительный линкер моделируется как гибкий цилиндр. Чтобы принять во внимание энтропийные эффекты, предполагалось, что линкер подчиняется поведению гауссовой цепи. Таким образом, плотность распределения флуорофора постепенно падает по мере удаления от точки прикрепления.Для неявной модели 55 аминокислотных остатков (методы SI и таблица S3 SI) между структурированными частями C-конца TGR5 и GFP рассматривались как гибкая последовательность с неизвестной структурой с длиной ~ 203,5 Å при максимальном удлинении.

Оба метода моделирования компоновщика дали очень похожие результаты. Модель димеризации (1/8) показывает распределение расстояний между положениями флуорофора между 25–150 Å с наибольшей вероятностью при 55 Å и 60 Å для явной и неявной линкерных моделей, соответственно.Расстояния между флуорофорами в моделях (4/5) и (5/6) распределяются аналогичным образом с наибольшей вероятностью около 95–110 Å; т.е. расстояние до большинства конформеров слишком велико для значительного FRET. Таким образом, неявные и явные линкерные модели показывают очень похожие распределения расстояний между красителями для всех моделей димеров: неявная модель показывает сдвиг на 5 Å в сторону большей длины для димера (1/8) и сдвиг на 15 Å в сторону меньшей длины для димера. (4/5) димерная модель.

Наконец, мы можем заключить, что оба метода моделирования линкера предсказали FRET и должны отличать димер 1/8 от димера 4/5 и димера 5/6, соответственно, потому что распределение расстояний между зондами FRET имеет характерный пик на коротких расстояниях (рис.6б). Однако ожидается, что распределения расстояний между зондами FRET двух димеров с участием TM5 не будут различаться в наших экспериментах с FRET (Рис. 6b).

На первом этапе олигомеризации задействованы контактные сайты в TM1 и спирали 8

Форма распределения расстояний (определенная с помощью моделирования нашего линкера) и зависимое от концентрации изменение в E _{среднее} (с использованием MFIS -FRET эксперименты по титрованию) должны позволить нам различать (i) границы раздела олигомеризации и (ii) характер олигомеризации.

Независимая от концентрации эффективность FRET (рис. 4) варианта TGR5 Y111A предполагает преимущественное присутствие гомодимеров. Таким образом, это идеальный вариант для проверки того, какое из наших распределений зондов расстояния лучше всего описывает вызванную FRET кривую гашения доноров ε ( t ). На рис. 7a показаны подгонки с использованием модели с полным распределением расстояний (FRET и Non-FRET) соответствующих димерных моделей (рис. 6b, таблица SI 4). Только распределение расстояний модели димера 1/8 дает статистически удовлетворительное соответствие, судя по взвешенным остаткам ( вес.res .) и самый маленький χ _r ² . Следовательно, TM1 и спираль 8, скорее всего, образуют первичный интерфейс олигомеризации.

Фиг. 7

Модели олигомеризации TGR5.

( a ) Подгонка кривой FRET-индуцированного тушения доноров ε ( t ) на TGR5 Y111A с двумя частицами, нормализованными к единице: (i) Димер (фракция x _Димер ) с полным распределением расстояний (FRET и Non-FRET) соответствующих моделей димеров (рис.6b) и (ii) только донорные / неактивные молекулы FRET. Только распределение расстояний модели димера 1/8 дает удовлетворительное соответствие, о чем судят по взвешенным остаткам и уменьшенному хи-квадрат χ _r ² . Результаты соответствия TGR5 Y111A для x _Димер : 1/8 димер: 0,27; Димер 4/5: 0,59; Димер 5/6: 0,73. ( b ) На схематическом изображении показаны два отдельных видимых расстояния от интерфейсов (1/8) и (4/5). Оба R _Димер могут быть преобразованы в курсы FRET.В олигомере две скорости FRET складываются и должны быть свернуты для вычисления нового видимого расстояния R _{( олигомер )} . Полученное распределение расстояний аналогично димеру (1/8). ( c ) Зависимость олигомеризации TGR5, отслеживаемая по эффективности FRET (эксперимент (черный) и смоделированная (красный)), от донорно-акцепторного соотношения c _A / c _D . В клетках концентрация донора, акцептора и общая концентрация TGR5 (включая неактивную mCherry (30%)) варьировалась от 0.25–6,3 мкМ, 0,1–5,0 мкМ и 0,5–13 мкМ соответственно. Димер состоит из донорно-акцепторного расстояния 45 Å, а тетрамер состоит из двух димеров, разделенных 100 Å. Смоделированная константа диссоциации димера K _D1 была зафиксирована на уровне 10 нМ для всех вариантов TGR5. Значения смоделированных констант диссоциации олигомера (тетрамера) были: K _D2 (TGR5 wt) = 70 нМ, K _D2 (TGR5 Y111F) = 200 нМ, K _D2 (TGR5 Y111A) = 2000 нМ. ). ( d ) Разумны два возможных олигомера I.((1/8) -4: 5- (1/8) и II. (1/8) -5: 6- (1/8): мономеры TGR5 образуют димер с сайтами контакта в TM1 (синий кружок) и H8 (красный кружок). H8 присоединен к флуоресцентным гибридным белкам (GFP и mCherry). В сайтах контакта тетрамера в TM4 (зеленый кружок) и TM5 (желтый) ( I ) или TM5 (желтый) и TM6 (оранжевый ) ( II ) создают второй интерфейс, способствующий организации линейного олигомера.

Из тех же экспериментов по титрованию мы заключаем, что TGR5 wt и TGR5 Y111F способны образовывать олигомеры более высокого порядка из-за зависящего от концентрации увеличения эффективности FRET (Рисунок.4в). Это открытие означает, что по крайней мере второй интерфейс должен существовать для образования гомоолигомера TGR5. Как показано на рис. 6b, средние видимые расстояния между флуоресцентными белками, прикрепленными к спирали 8 TGR5 (без связанного G-белка), составляли 120 Å для модели димера (4/5) и 103 Å для модели (5/6), соответственно, а эффективное кажущееся расстояние между олигомерами для обоих образцов составляет приблизительно 49 Å (коричневая кривая на фиг. 7b) из-за присутствия нескольких акцепторов. Мы применили моделирование димера / тетрамера к нашим данным MFIS, чтобы оценить две соответствующие константы ассоциации (рис.7c, SI Рис.6) путем анализа зависимости средней эффективности FRET E _mean от отношения концентрации донора к акцептору ( c _D / c _A ). Более того, разброс в эффективности FRET, наблюдаемый на рис. 7c, также вызван различными концентрациями белка в клетке и принимается во внимание при моделировании (SI рис. 6a – c). Для TGR5 wt и Y111F (K _D в диапазоне 100 нМ) моделирование показывает, что почти все димеры образуют тетрамеры, тогда как TGR5 Y111A образует преимущественно димеры (K _D в диапазоне мкм).

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.
  Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г.,
  браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.
  Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie
потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт
не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к
остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

4045HFC04 | Промышленный дизельный двигатель

Chang Lab

220.Smith, P.T .; Benke, B.P .; An, L .; Kim, Y .; Kim, K .; Чанг, К. Дж. «Надмолекулярная пористая платформа с органической клеткой способствует электрохимическому выделению водорода из воды, катализируемому порфиринами кобальта»,
ХимЭлектроХим
2021 , г.
8 , г.
1653–1657.
[HTML]
[pdf]

219.
Wuttig, A .; Деррик, Дж. С .; Loipersberger, M .; Снайдер, А .; Хед-Гордон, М .; Chang, C.J .; Тосте, Д. «Контролируемый перенос одного электрона через взаимодействие металл-лиганд приводит к появлению различных путей радикалов, катализируемых электрокатализацией никелем»,
Дж.Являюсь. Chem. Soc.
2021 .
[HTML]
[pdf]

218.
Iwashita, H .; Castillo, E .; Мессина, М. С .; Swanson, R.A .; Чанг, К. Дж. «Стратегия обнаружения и маркировки, основанная на тандемной активности, позволяет визуализировать трансклеточную передачу сигналов перекиси водорода»,
PNAS
2021 , г.
118 ,
e2018513118.
[HTML]
[pdf]

217.
Kim J. H .; Matsubara T .; Ли Дж .; Феноллар-Феррер К.; Хан К .; Kim D .; Jia S .; Chang C.J .; Ян Х .; Nagano T .; Краус К.В. «Лизосомальный SLC46A3 модулирует цитозольный гомеостаз меди в печени»,
Нац. Commun.
2021 , г.
12 , г.
1–12.
[HTML]
[pdf]

216.
Wang, Z .; Detomasi, T. C .; Чанг, К. Дж. «Подход с использованием двойного флуорофорного сенсора для ратиометрической флуоресцентной визуализации калия в живых клетках»,
Chem. Sci.
2021 , г.
12 , г.
1720-1729 гг.[HTML]
[pdf]

215.
Mao, Y .; Loipersberger, M .; Kron, K.J .; Деррик, Дж. С .; Chang, C.J .; Sharada, S.M .; Хед-Гордон, М.
«Последовательное включение сольватации континуума в анализ энергетического разложения: теория и применение к молекулярным катализаторам восстановления CO2»,
Chem. Sci.
2021 , г.
12 , г.
1398–1414.
[HTML]
[pdf]

214.
Шен, X .; Wang, R .; Kim, M.J .; Ху, К.; Hsu, C .; Yao, J .; Klages-Mundt, N .; Тиан, Ю. Линн, Э .; Brewer, T. F .; Zhang, Y .; Arun, B .; Gan, B .; Андрефф, М .; Takeda, S .; Chen, J .; Park, J .; Ши, X .; Chang, C.J .; Jung, S. Y .; Qin, J .; Ли, Л. «Всплеск повреждений ДНК связывает транскрипционное репрограммирование и гематопоэтический дефицит при анемии Фанкони»,
Мол. Ячейка
2020 .
80 , г.
1013-1024.
[HTML]
[pdf]

213.
Деррик, Дж. С., Лойперсбергер, М .; Чаттерджи, Р.; Iovan, D.A .; Smith, P.T .; Chakarawet, K .; Яно, Дж .; Long, J. R .; Хед-Гордон, М .; Чанг, К. Дж. «Взаимодействие металл-лиганд посредством обменного взаимодействия способствует катализируемому железом электрохимическому восстановлению CO2 при низких перенапряжениях»,
J. Am. Chem. Soc.
2020 , г.
142 , 20489–20501.
[HTML]
[pdf]

212.
Amor, M .; Ceballos, A .; Wan, J .; Simon, C.P .; Aron, A. T .; Chang, C.J .; Hellman, F .; Комейли, А. «Магнитотактические бактерии накапливают большой пул железа, отличный от их кристаллов магнетита»,
Заявл.Environ. Microbiol.
2020 , г.
86 ,
e01278–20.
[HTML]
[pdf]

211.
Zhao, Y .; Wei, L .; Tagmount, A .; Логуинов, А .; Sobh, A .; Хаббард, А .; McHale, C.M .; Chang, C.J .; Vulpe, C.D .; Чжан, Л. «Применение общегеномной CRISPR для идентификации известных и новых генов и путей, которые модулируют токсичность формальдегида»,
Атмосфера
2020 , г.
128701.
[HTML]

210.Toh, J. D. W .; Crossley, S. W. M .; Bruemmer, K. J .; Ge, E.J .; Он, Д .; Iovan, D.A .; Чанг, К. Дж. «Определенные пути N-деметилирования РНК, катализируемые негемовым железом ALKBH5 и ферментами FTO, позволяют регулировать скорость высвобождения формальдегида»,
PNAS
2020 , г.
117 ,
25284-25292.
[HTML]
[pdf]

209.
Morstein, J .; Höfler, D .; Ueno, K .; Jurss, J. W .; Walvoord, R. R .; Bruemmer, K. J .; Rezgui, S.P .; Brewer, T. F .; Сайто, М.; Michel, B.W .; Чанг, К. Дж. «Лиганд-ориентированный подход к зондированию на основе активности: разработка флуоресцентных зондов палладацикла, которые позволяют обнаруживать эндогенный окись углерода»,
J. Am. Chem. Soc.
2020 , г.
142 ,
15917–15930.
[HTML]
[pdf]

208.
Lee, S .; Chung, C.Y.-S .; Лю, П., Крациун, Л.; Nishikawa, Y .; Bruemmer, K. J .; Hamachi, I .; Saijo, K .; Miller, E.W .; Чанг, К. Дж. «Активное зондирование с помощью металл-направленной стратегии ацилимидазола выявляет зависящие от типа клетки пулы лабильной мозговой меди»,
Дж.Являюсь. Chem. Soc.
2020 , г.
142 ,
14993–15003.
[HTML]
[pdf]

207.
Bruemmer, K. J .;
Crossley, S. W. M .;
Чанг, К. Дж.
«Зондирование на основе активности: подход к синтетическим методам для селективной молекулярной визуализации и не только»,
Angew. Chem. Int. Эд.
2020 , г.
59 , г.
13734–13762.[HTML]
[pdf]

206.
Proppe, A.H .; Li, Y.C .; Аспуру-Гузик, А .; Berlinguette, C.P .; Chang, C.J .; Cogdell, R .; Дойл, А.Г .; Flick, J .; Gabor, N.M .; van Grondelle, R .; Hammes-Schiffer, S .; Jaffer, S.A .; Kelley, S.O .; Leclerc, M .; Лео, К .; Mallouk, T. E .; Narang, P .; Schlau-Cohen, G.S .; Scholes, G.D .; Vojvodic, A .; Yam, V. W.-W .; Yang, J. Y .; Сарджент, Э.
«Биоинспирация в сборке и катализе света»,
Нац.Rev. Mater.
2020 , г.
59 , г.
1–19.
[HTML]
[pdf]

205.
Smith, P.T .;
Weng, S .;
Чанг, К. Дж.
«Стратегия окислительно-восстановительного посредника, вдохновленная NADH, для содействия переносу электронов и протонов во второй сфере для совместного электрохимического восстановления CO2, катализируемого порфирином железа»,
Inorg.Chem.
2020 , г.
59 , г.
9270–9278.
[HTML]
[pdf]

204.
Loipersberger, M .; Zee, D. Z .; Panetier, J. A .; Chang, C.J .; Long, J. R .; Хед-Гордон, М.
«Вычислительное исследование электрокатализатора на основе полипиридина железа (II) для восстановления CO2: ключевые роли внутримолекулярных взаимодействий в связывании CO2 и переносе протонов»
Inorg. Chem.
2020 , г.
59 , г.
8146–8160.DOI: 10.1021 / acs.inorgchem.0c00454
[HTML]
[pdf]

203.
Протченко, О .; Baratz, E .; Jadhav, S .; Li, F .; Шакури-Элиза, М .; Гаврилова, О .; Ghosh, M. C .; Cox, J. E .; Maschek, J. A .; Тюрин, В. А .; Тюрина Ю.Ю .; Bayir, H .; Aron, A. T .; Chang, C.J .; Каган, В. Э .; Филпотт, К.
«Железный шаперон PCBP1 защищает печень мышей от перекисного окисления липидов и стеатоза»,
Гепатология
2020 , г.
DOI: 10.1002 / hep.31328
[HTML]
[pdf]

202.Ueno, K .; Morstein, J .; Ofusa, K .; Naganos, S .; Suzuki-Sawano, E .; Минегиши, С .; Rezgui, S.P .; Kitagishi, H .; Michel, B.W .; Chang, C.J .; Horiuchi, J .; Сайто, М.
«Окись углерода, ретроградный мессенджер, генерируемый в нейронах постсинаптического грибовидного тела, вызывает неканонический выброс дофамина»,
J. Neurosci.
2020 , г.
40 , 3533–3548.
[HTML]
[pdf]

201.
Zee, D. Z .;
Nippe, M .;
King, A.E .;
Чанг, К. Дж.;
Лонг, Дж. Ф.
«Настройка взаимодействий второй координационной сферы в комплексах полипиридил-железо для достижения селективного электрокаталитического восстановления двуокиси углерода до окиси углерода»,
Inorg. Chem.
2020 , г.
59 , 5206–5217.
[HTML]
[pdf]

200.
Смит, П. Т .;
Николс, Э. М .;
Cao, Z .;
Чанг, К. Дж.
«Гибридные катализаторы для искусственного фотосинтеза: объединение подходов молекулярного, материального и биологического катализа»,
В соотв.Chem. Res.
2020 , г.
53 , 575–587.
[HTML]
[pdf]

199.
Elledge, S.K .;
Tran, H.L .;
Christian, A.H .;
Steri, V .;
Hann, B .;
Toste, F.D .;
Chang, C.J .;
Уэллс, Дж. А.
«Систематическая идентификация сконструированных метионинов и оксазиридинов для эффективного, стабильного и сайт-специфичного биоконъюгирования антител»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2020 , г.
117 , 5733–5740.
[HTML]
[pdf]

198.Венкатеш, Д .;
О’Брайен, Н. А .;
Зандкарими, Ф .;
Тонг, Д. Р .;
Stokes, M. E .;
Dunn, D. E .;
Kengmana, E.S .;
Aron, A. T .;
Klein, A. M .;
Csuka, J.M .;
Moon, S. H .;
Конрад, М .;
Chang, C.J .;
Lo, D. C .;
Д’Алессандро, А .;
Prives, C .;
Стоквелл, Б.
«MDM2 и MDMX способствуют ферроптозу за счет PPARα-опосредованного ремоделирования липидов»,
Genes Dev.
2020 , г.
34 , 526–543.
[HTML]
[pdf]

197.
Liao, Y .;
Zhao, J .;
Булек, К .;
Тан, Ф.;
Чен, X .;
Cai, G .;
Jia, S .;
Fox, P. L .;
Huang, E .;
Pizarro, T. T .;
Калады, М. Ф .;
Джексон, М. У .;
Bao, S .;
Sen, G.C .;
Stark, G.R .;
Chang, C.J .;
Ли, X.
«Воспаление мобилизует метаболизм меди, способствуя онкогенезу толстой кишки через ось IL-17-STEAP4-XIAP»,
Нац. Commun.
2020 , г.
11 , г.
900.
[HTML]
[pdf]

196.
Охата, Дж .;
Кришнамурти, Л .;
Гонсалес, М. А .;
Xiao, T .;
Iovan, D.A .;
Toste, F.D .;
Miller, E.W .;
Чанг, К.Дж.
«Подход биоконъюгирования метионина на основе активности для разработки репортеров визуализации, активируемых близостью»,
САУ Cent. Sci.
2020 , г.
6 , г.
32-40.
[HTML]
[pdf]

195.
Smith, P.T .;
Kim, Y .;
Benke, B.P .;
Kim, K .;
Чанг, К. Дж.
«Супрамолекулярная настройка делает возможным селективное восстановление кислорода, катализируемое порфиринами кобальта, для прямого электросинтеза пероксида водорода»,
Angew.Chemie. Int. Эд.
2020 , г.
59 , г.
4902-4907.
[HTML]
[pdf]

194.
Хафф, Т. С .;
Camarena, V .;
Sant, D.W .;
Wilkes, Z .;
Van Booven, D .;
Aron, A. T .;
Muir, R.K .;
Renslo, A. R .;
Chang, C.J .;
Monje, P. V .;
Ванга, Г.
«Осцилляторная передача сигналов цАМФ быстро изменяет метилирование h4K4»,
Life Sci. Альянс
2019 , г.
3 , г.
e2019.
[HTML]
[pdf]

193.Охата, Дж .;
Bruemmer, K. J .;
Чанг, К. Дж.
«Методы определения активности для мониторинга активных форм углерода, монооксида углерода и формальдегида в живых системах»,
В соотв. Chem. Res.
2019 , г.
52 ,
2841-2848.
[HTML]
[pdf]

192.
Chung, C. Y .;
Posimo, J.M .;
Ли, S .;,
Цанг, Т .;
Дэвис, Дж. М .;
Brady, D.C .;
Чанг, К. Дж.
«Основанный на активности ратиометрический датчик FRET выявляет вызванные онкогеном изменения в лабильных пулах меди, вызванные измененным метаболизмом глутатиона»,
Proc.Natl. Акад. Sci. США
2019 , г.
116 ,
18285-18294.
[HTML]
[pdf]

191.
Christian, A.H .;
Jia, S .;
Cao, W .;
Zhang, P .;
Meza, A. T .;
Sigman, M. S .;
Chang, C.J .;
Тосте, Ф.
«Физико-органический подход к настройке реагентов для селективного и стабильного биоконъюгирования метионина»,
J. Am. Chem. Soc.
2019 , г.
141 ,
12657-12662.
[HTML]
[pdf]

190.Su, T. A .;
Bruemmer, K. J .;
Chang, C.J .;
«Люциферины в клетках для определения биолюминесцентной активности»,
Curr. Opin. Биотехнологии
2019 , г.
60 , г.
198-204.
[HTML]
[pdf]

189.
Iovan, D.A .;
Jia, S .;
Chang, C.J .;
«Подходы неорганической химии к зондированию на основе активности: от металлических датчиков до биоортогональной химии металлов»,
Inorg Chem
2019 , г.
58 , г.
13546-13560.[HTML]
[pdf]

188.
Lee, S .;
Ульяна, А .;
Тейлор, М. К .;
Chakarawet, K .;
Rama, S .;
Bandaru, S .;
Gul, S .;
Xu, J .;
Ackerman, C.M .;
Chatterjee, R .;
Furukawa, H .;
Reimer, J. A .;
Яно, Дж .;
Gadgil, A .;
Long, G.J .;
Grandjean, F .;
Long, J. R .;
Chang, C.J .;
Обнаружение и восстановление железа с помощью функционализированного пористого полимера, нанесенного на пробу воды из окружающей среды «,
Chem. Sci.
2019 , г.
10 , г.
6651.
[HTML]
[pdf]

187.Балдари, С .;
Di Rocco, G .;
Heffern, M.C .;
Su, T. A .;
Chang, C.J .;
Тойетта, Г.
«Влияние хелатирования меди на клетки BRAFV600E положительной карциномы толстой кишки»,
Раки
2019 , г.
11 , г.
659.
[HTML]

186.
Jia, S .;
Он, Д .;
Chang, C.J .;
«Биоинспирированные реагенты тиофосфородихлоридата для хемоселективного биоконъюгирования гистидина»,
J. Am. Chem. Soc.
2019 , г.
141 ,
7294-7301.[HTML]
[pdf]

185.
Su, T. A .;
Shihadih, D.A .;
Cao, w .;
Detomasi, T. C ..;
Heffern, M.C .;
Jia, S .;
Stahl, A .;
Chang, C.J .;
«Модульная платформа ионофоров для печеночно-направленного добавления меди в клетки и животных»,
J. Am. Chem. Soc.
2018 , г.
140 ,
13764-13774.
[HTML]
[pdf]
[Обзор JACS]

184.
Юттуконда, Л. Дж .;
Green, E.R .;
Лонерган, З.Р.;
Heffern, M.C .;
Chang, C.J .;
Skaar, E. P .;
«Acinetobacter baumannii OxyR регулирует транскрипционный ответ на перекись водорода»,
Инфекция и иммунитет
2018 , г.
87 ,
e00413-418.
[HTML]
[pdf]

183.
Николс, Э. М .;
Chang, C.J .;
«Многоточечная донорная добавка с водородными связями на основе мочевины способствует электрохимическому восстановлению CO2, катализируемому никелевым цикламом»,
Металлоорганические
2018 , г.
38 , г.
1213-1218.[HTML]
[pdf]

182.
Smith, P.T .;
Benke, B.P .;
Cao, Z .;
Kim, Y .;
Николс, Э. М .;
Kim, K .;
Chang, C.J .;
«Порфирины железа, встроенные в супрамолекулярную пористую органическую клетку для электрохимического восстановления CO2 в воде»,
Angew. Chem. Int. Эд.
2018 , г.
57 , г.
9684-9688.
[HTML]
[pdf]

181.
Кришнамурти, Л .;
Chang, C.J .;
«Экзосомальная НАДФН-оксидаза: передача редокс-сигналов для исцеления»,
Биохимия
2018 , г.
57 , г.
3993-3994.[HTML]
[pdf]

180.
Xiao, T .;
Ackerman, C.M .;
Carroll, E.C .;
Jia, S .;
Hoagland, A .;
Chan, J .;
Тайский, B .;
Liu, C. S .;
Isacoff, E. Y .;
Chang, C.J .;
«Медь регулирует циклы покоя-активности через систему голубого пятна — норэпинефрин»,
Nature Chem. Биол.
2018 , г.
14 , г.
655-663.
[HTML]
[pdf]
[C&EN]
[HWNI]

179.
Chung, C.Y.S .;
Тимблин, Г. А .;
Saijo, K .;
Чанг, К.J .;
«Универсальный гистохимический подход к обнаружению перекиси водорода в клетках и тканях на основе окрашивания пуромицином»,
J. Am. Chem. Soc.
2018 , г.
140 ,
6109-6121.
[HTML]
[pdf]

178.
Bruemmer, K. J .;
Green, O .;
Su, T. A .;
Шабат, Д .;
Chang, C.J .;
«Хемилюминесцентные зонды для определения активности формальдегида, высвобождаемого в результате разложения фолиевой кислоты у живых мышей»,
Angew. Chem. Int. Эд.
2018 , г.
57 , г.
7508-7512.[HTML]
[pdf]

177.
Ackerman, C.M .;
Вебер, П. К .;
Xiao, T .;
Тайский, B .;
Kuo, T. J .;
Zhang, E .;
Pett-Ridge, J .;
Chang, C.J .;
«Мультимодальная визуализация LA-ICP-MS и nanoSIMS позволяет картировать медь в мегамитохондриях фоторецепторов в модели болезни Менкеса у рыбок данио»,
Металломика
2018 , г.
10 , г.
474-485.
[HTML]
[pdf]

176.
Цао, З. *;
Деррик, Дж. С. *;
Сюй, Дж. *;
Gao, R .;
Гонг, М .;
Николс, Э.М .;
Smith, P.T .;
Лю, X .;
Wen, X .;
Coperet, C .;
Chang, C.J .;
«Хелатирующие N-гетероциклические карбеновые лиганды позволяют регулировать электрокаталитическое восстановление CO2 до формиата и монооксида углерода с помощью металлорганической химии поверхности»,
Angew. Chem. Int. Эд.
2018 , г.
57 , г.
4981-4985.
[HTML]
[pdf]

175.
Николс, Э. М. ^* ;
Derrick, J. S. ^* ;
Нистанаки, С.К .;
Smith, P.T .;
Чанг, К. Дж.;
«Позиционные эффекты амидных подвесок второй сферы на электрохимическое восстановление CO2, катализируемое порфиринами железа»,
Chem. Sci.
2018 , г.
9 , г.
2952-2960.
[HTML]
[pdf]

174.
Jia, S. ^* ;
Рамос-Торрес, К. М. ^* ;
Колемен, С .;
Ackerman, C.M .;
Chang, C.J .;
«Настройка цветовой палитры флуоресцентных медных датчиков посредством систематической замены гетероатомов в ядрах Rhodol»,
ACS Chem.Биол.
2018 , г.
13 , г.
1844-1852 гг.
[HTML]
[pdf]

173.
Diercks, C. S .;
Lin, S .;
Корниенко, Н .;
Капустин, Э. А .;
Николс, Э. М .;
Zhu, C .;
Zhao, Y .;
Chang, C.J .;
Яги. О. М.
«Ретикулярная электронная настройка активных центров порфирина в ковалентных органических каркасах для электрокаталитического восстановления двуокиси углерода»,
J. Am. Chem. Soc.
2018 , г.
140 ,
1116-1122.
[HTML]
[pdf]

172.Aron, A. T .;
Ривз, А.Г .;
Chang, C.J .;
«Флуоресцентные зонды, определяющие активность железа в биологических системах»,
Curr. Opin. Chem. Биол.
2018 , г.
43 ,
113-118.
[HTML]
[pdf]

171.
Camarena, V .;
Sant, D.W .;
Хафф, Т. С .;
Мустафи, С .;
Muir, R.K .;
Aron, A. T .;
Chang, C.J .;
Renslo, A. R .;
Monje, P. V .;
Wang, G .;
«Передача сигналов цАМФ регулирует гидроксиметилирование ДНК путем увеличения внутриклеточного лабильного пула двухвалентного железа»,
eLIFE
2017 , г.
6 , г.
e29750.[HTML]

170.
Ackerman, C.M .;
Chang, C.J .;
«Медные сигналы в мозгу и за его пределами»,
J. Biol. Chem.
2017 , г.
293 ,
4628-4635.
[HTML]

169.
Aron, A. T. ^* ;
Heffern, M. C. ^* ;
Lonergan, Z.R. ^* ;
Vander Wal, M. N .;
Бланк, Б. Р .;
Spangler, B .;
Zhang, Y .;
Park, H.M .;
Stahl, A .;
Renslo, A. R .;
Скаар, Э.П.;
Chang, C.J .;
«Биолюминесцентная визуализация in vivo лабильного накопления железа в мышиной модели инфекции Acinetobacter baumannii»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2017 , г.
114 ,
12669–12674.
[HTML]
[pdf]

168.
Гонг, М. ^* ;
Cao, Z. ^* ;
Лю, W. ^* ;
Николс, Э. М .;
Smith, P.T .;
Деррик, Дж. С .;
Liu, Y. S .;
Liu, J .;
Wen, X .;
Чанг, К.J .;
«Супрамолекулярные порфириновые клетки, собранные на границах раздела молекул и материалов для электрокаталитического восстановления CO»,
САУ Cent. Sci.
2017 , г.
3 , г.
1032-1040.
[HTML]
[pdf]

167.
Бургос-Барраган, Г .;
Wit, N .;
Meiser, J .;
Динглер, Ф. А .;
Пицке, М .;
Mulderrig, L .;
Pontel, L.B .;
Росадо, И. В .;
Brewer, T. F .;
Cordell, R.L .;
Монахи, П. С .;
Chang, C.J .;
Васкес, А .;
Патель, К. Дж.
«Млекопитающие переводят эндогенный генотоксичный формальдегид в одноуглеродный метаболизм»,
Природа
2017 , г.
548 ,
549-554.[HTML]
[pdf]

166.
Bruemmer, K. J. ^* ;
Brewer, T. F. ^* ;
Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные зонды для визуализации формальдегида в биологических системах»,
Curr. Opin. Chem. Биол.
2017 , г.
39 , г.
17-23.
[HTML]
[pdf]

165.
Brewer, T. F .;
Бургос-Барраган, Г .;
Wit, N .;
Patel, K. J .;
Чанг, К. Дж.
«Основанная на реактивности 2-аза-Коуп платформа для ратиометрической флуоресцентной визуализации формальдегида в живых клетках»,
Chem.Sci.
2017 , г.
8 , г.
4073-4081.
[HTML]
[pdf]

164.
Bruemmer, K. J. ^* ;
Walvoord, R.R. ^* ;
Brewer, T. F .;
Бургос-Барраган, Г .;
Wit, N .;
Pontel, L.B .;
Patel, K. J .;
Чанг, К. Дж.
«Разработка общего триггера реакции Aza-Cope применительно к флуоресцентной визуализации формальдегида в живых клетках»,
J. Am. Chem. Soc.
2017 , г.
139 ,
5338-5350.[HTML]
[pdf]

163.
Чанг, К. Дж.
«Биоинорганическая жизнь и нейронная активность: к химии сознания?»,
В соотв. Chem. Res.
2017 , г.
50 , г.
535-538.
[HTML]
[pdf]

162.
Lin, S .;
Ян, X .;
Jia, S .;
Недели, А. М .;
Хорнсби, М .;
Ли, П. С .;
Ничипорук, Р. В .;
Iavarone, A.T .;
Wells, J. A .;
Toste, F.D .;
Чанг, К. Дж.
«Реактивы на основе редокс для хемоселективного биоконъюгирования метионина»,
Наука
2017 , г.
355 ,
597-602.[HTML]
[pdf]
[Новости C&E]
[Лаборатория Беркли]
[Phys. Org]
[В конвейере]
[ACS Chem. Биол.]
[F1000]

161.
Ackerman, C.M .;
Lee, S .;
Чанг, К. Дж.
«Аналитические методы визуализации металлов в биологии: от метаболизма переходных металлов к передаче сигналов переходных металлов»,
Анал. Chem.
2017 , г.
89 ,
22-41.
[HTML]
[pdf]

160.
Heffern, M.C .;
Парк, Х.М .;
Au-Yeung, H. Y .;
Van de Bittner, G.C .;
Ackerman, C.M .;
Шталь, А.
Чанг, К. Дж.
«Визуализация биолюминесценции in vivo выявляет дефицит меди на мышиной модели неалкогольной жировой болезни печени»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2016 , г.
113 ,
14219-14224.
[HTML]
[pdf]

159.
Кашиф, М. К .;
Milhuisen, R.A .;
Nippe, M .;
Hellerstedt, J .;
Zee, D. Z .;
Даффи, Н. У .;
Halstead, B .;
Де Анжелис, Ф.;
Fantacci, S .;
Fuhrer, M. S .;
Chang, C.J .;
Cheng, Y.-B .;
Long, J. R .;
Spiccia, L .;
Бах, У.
«Полипиридиловые комплексы кобальта как прозрачные твердотельные материалы для переноса заряда, пригодные для обработки в растворе»,
Adv. Energy Mater.
2016 , г.
1600874.
[HTML]
[pdf]

158.
Aron, A. T .;
Loehr, M.O .;
Bogena, J .;
Чанг, К. Дж.
«Зонд FRET на основе эндопероксидной реактивности для ратиометрической флуоресцентной визуализации пулов лабильного железа в живых клетках»,
Дж.Являюсь. Chem. Soc.
2016 , г.
138 ,
14338-14346.
[HTML]
[pdf]

157.
Rodella, U .;
Скорцето, М .;
Duregotti, E .;
Negro, S .;
Dickinson, B.C .;
Chang, C.J .;
Юки, Н .;
Ригони, М .;
Монтекукко, К.
«Животная модель синдрома Миллера Фишера: митохондриальная перекись водорода вырабатывается аутоиммунной атакой нервных окончаний и активирует шванновские клетки»,
Neurobiol. Дис.
2016 , г.
96 ,
95-104.[HTML]
[pdf]

156.
Cox, A. G .;
Цомидес, А .;
Kim, A.J .;
Saunders, D .;
Hwang, K. L .;
Evason, K. J .;
Heidel, J .;
Браун, К. К .;
Юань, М .;
Lien, E.C .;
Lee, B.C .;
Nissim, S .;
Dickinson, B.C .;
Chhangawala, D .;
Chang, C.J .;
Asara, J.M .;
Houvras, Y .;
Гладышев, В. Н .;
Гесслинг, В.
«Селенопротеин H является важным регулятором окислительно-восстановительного гомеостаза, который взаимодействует с p53 в развитии и онкогенезе»,
Proc. Natl. Acas.Sci. США
2016 , г.
113 ,
E5562-E5571.
[HTML]
[pdf]

155.
Рамос-Торрес, К. М .;
Колемен, С .;
Чанг, К. Дж.
«Координационная химия тиоэфиров для молекулярной визуализации меди в биологических системах»,
Isr. J. Chem.
2016 , г.
56 ,
724-737.
[HTML]
[pdf]

154.
Axelson, J.C .;
Gonzalez, M. I .;
Meihaus, K. R .;
Chang, C.J .;
Лонг, Дж.Р.
«Синтез и характеристика тетраподального лиганда NO ₄ ^4- и его комплексов переходных металлов»,
Inorg. Chem.
2016 , г.
55 , г.
7527-7534.
[HTML]
[pdf]

153.
Spangler, B .;
Morgan, C.W .;
Fontaine, S.D .;
Vander Wal, M. N .;
Chang, C.J .;
Wells, J. A .;
Ренсло, А.
«Зонд на основе реактивности внутриклеточного пула лабильного двухвалентного железа»,
Nature Chem.Биол.
2016 , г.
12 , г.
680-685.
[HTML]
[pdf]

152.
Cao, Z .;
Kim, D .;
Yu, Y .;
Xu, J .;
Lin, S .;
Wen, X .;
Николс, Э. М .;
Jeong, K .;
Reimer, J. A .;
Ян, П .;
Чанг, К. Дж.
«Подход функционализации молекулярной поверхности к настройке электрокатализаторов наночастиц для восстановления двуокиси углерода»,
J. Am. Chem. Soc.
2016 , г.
138 ,
8120-8125.
[HTML]
[pdf]

151.Lee, S .;
Барин, Г .;
Ackerman, C.M .;
Мучендици, А .;
Xu, J .;
Reimer, J. A .;
Луценко, С .;
Long, J. R .;
Чанг, К. Дж.
«Захват меди в пористом полимере, функционализированном тиоэфиром, применяемый для обнаружения болезни Вильсона»,
J. Am. Chem. Soc.
2016 , г.
138 ,
7603-7609.
[HTML]
[pdf]

150.
Кришнамурти, Л .;
Cotruvo, Jr., J. A .;
Chan, J .;
Kaluarachchi, H .;
Мучендици, А .;
Пендяла, В.S .;
Jia, S .;
Aron, A. T .;
Ackerman, C.M .;
Vander Wal, M. N .;
Guan, T .;
Smaga, L.P .;
Farhi, S.L .;
New, E.J .;
Луценко, С .;
Чанг, К. Дж.
«Медь регулирует циклический АМФ-зависимый липолиз»,
Nature Chem. Биол.
2016 , г.
12 , г.
586-592.
[HTML]
[pdf]
[ Biomedical Beat Story]
[Сегмент UC Science Today]
[PictureFit YouTube Video]
[Новости LBNL]
[Новости Калифорнийского университета в Беркли]
[ Daily Mail News Story]
[ История новостей генной инженерии и биотехнологии ]
[ Dr Oz Reviews Story]
[ История мужского фитнеса ]
[ Deccan Herald News Story]
[ Fitness First Mag Story]
[ Индо-азиатская служба новостей История]
[ Health Canal News Story]
[ Первое сообщение Новость]
[ Business Standard News Story]
[ The Health Site News Story]
[ Hindustan Times News Story]
[ История Can-India News ]
[ Новости естествознания Рассказ]
[ Times of India News Story]
[ Money Control News Story]
[ Вестник Американского совета по науке и здоровью, ]
[ China Topix News Story]
[Новости MSN]
[ Press Liberal News Story]
[ Заголовки новостей Рассказ]
[ The Sentinel News Story]
[ Краткий отчет News Story]
[ Engine News Story]
[ 3 Новичка Новости]
[ HT Syndication News Story]
[ New York Indian News Story]

149.Liu, W .;
Truillet, C .;
Flavell, R.R .;
Brewer, T. F .;
Evans, M. J .;
Wilson, D.M .;
Чанг, К. Дж.
«Зонд на основе реактивности [ ¹⁸ F] FDG для получения изображений in vivo формальдегида с использованием позитронно-эмиссионной томографии»,
Chem. Sci.
2016 , г.
7 , г.
5503-5507.
[HTML]
[pdf]

148.
Томалин, Л. Э .;
Дэй, А. М .;
Андервуд, З. Э .;
Smith, G.R .;
Pezze, P.D .;
Rallis, C .;
Патель, В.;
Dickinson, B.C .;
Bahler, J .;
Brewer, T. F .;
Chang, C.J .;
Shanley, D.P .;
Телятина, Э.А.
«Увеличение внеклеточного H ₂ O ₂ вызывает двухфазный ответ во внутриклеточном H ₂ O ₂ , при этом гипероксидирование пероксиредоксина запускается только после того, как клеточная H ₂ O ₂ -буферная способность переполнена» ,
Free Radic. Биол. Med.
2016 , г.
95 ,
333-348.
[HTML]
[pdf]

147.Flavell, R.R .;
Truillet, C .;
Regan, M. K .;
Гангулы, Т .;
Blecha, J. E .;
Kurhanewicz, J .;
VanBrocklin, H.F .;
Кешари, К. Р .;
Chang, C.J .;
Evans, M. J .;
Уилсон, Д.М.
«Клеточные [ ¹⁸ F] FDG-гликозиламины для визуализации кислой микросреды опухоли с использованием позитронно-эмиссионной томографии»,
Bioconjugate Chem.
2016 , г.
27 , г.
170-178.
[HTML]
[pdf]

146.
Корниенко, Н .;
Zhao, Y .;
Клей, К.S .;
Zhu, C .;
Kim, D .;
Lin, S .;
Chang, C.J .;
Yaghi, O.M .;
Ян, П.
«Металлоорганические основы для электрокаталитического восстановления диоксида углерода»,
J. Am. Chem. Soc.
2015 , г.
137 ,
14129-14135.
[HTML]
[pdf]

145.
Чанг, К. Дж.
«В поисках гармонии в сигналах переходного металла»,
Nature Chem. Биол.
2015 , г.
111 ,
744-747.
[HTML]
[pdf]

144.Brewer, T. F .;
Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентный зонд на основе реактивности Aza-Cope для визуализации формальдегида в живых клетках»,
J. Am. Chem. Soc.
2015 , г.
37 , г.
10886-10889.
[HTML]
[pdf]
[ Новости химии и машиностроения История]

143.
Николс, Э. М .;
Gallagher, J. J .;
Liu, C .;
Вс, Ы .;
Resasco, J .;
Yu, Y .;
Sun, Y .;
Ян, П .;
Chang, M. C. Y .;
Чанг, К. Дж.
«Гибридный биоинорганический подход к преобразованию солнечной энергии в химическую»,
Proc.Natl. Акад. Sci. США
2015 , г.
112 ,
11461-11466.
[HTML]
[pdf]
[Новости LBNL]
[ ScienceDaily News Story]
[ Demanjo News Story]
[ Science Newsline News Story]
[ Обзор новостей о технологиях Рассказ о новостях]
[ Adaptive Scientist News Story]
[ Guldar News Story]
[Заголовки Министерства энергетики США]

142.
Lin, S .;
Diercks, C. S .;
Zhang, Y .;
Корниенко, Н.;
Николс, Э. М .;
Zhao, Y .;
Paris, A.R .;
Kim, D .;
Ян, П .;
Yaghi, O.M .;
Чанг, К. Дж.
«Ковалентные органические каркасы, содержащие порфирины кобальта для каталитического восстановления CO2 в воде»,
Наука
2015 , г.
346 ,
1208-1213.
[HTML]
[pdf]
[Новости LBNL]
[ Science News Story]

141.
Aron, A. T .;
Рамос-Торрес, К. М .;
Cotruvo, Jr., J. A .;
Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные зонды на основе распознавания и реактивности для изучения передачи сигналов переходными металлами в живых системах»,
В соотв.Chem. Res.
2015 , г.
48 , г.
2434-2442.
[HTML]
[pdf]

140.
Zee, D. Z .;
Chantarojsiri, T .;
Long, J. R .;
Чанг, К. Дж.
«Металлополипиридильные катализаторы для электро- и фотохимического восстановления воды до водорода»,
В соотв. Chem. Res.
2015 , г.
48 , г.
2027-2036 гг.
[HTML]
[pdf]

139.
Jurss, J. W .;
Хнайзер, Р. С .;
Панетье, Дж.А .;
Эль Роз, К. А .;
Николс, Э. М .;
Хед-Гордон, М .;
Long, J. R .;
Castellano, F. N .;
Чанг, К. Дж.
«Биоинспектированный дизайн окислительно-восстановительных лигандов для многоэлектронного катализа: эффекты расположения пиразиновых резервуаров на кобальте для электро- и фотокаталитического производства водорода из воды»,
Chem. Sci.
2015 , г.
6 , г.
4954-4972.
[HTML]
[pdf]

138.
Chantarojsiri, T .;
Sun, Y .;
Лонг, Дж.Р.;
Чанг, К. Дж.
«Водорастворимые комплексы железо (IV) -оксо, поддерживаемые пентапиридиновыми лигандами: влияние аксиальных лигандов на реактивность переноса атома водорода и кислорода»,
Inorg. Chem.
2015 , г.
54 ,
5879-5887.
[HTML]
[pdf]

137.
Brewer, T. F .;
Garcia, F.J .;
Onak, C. S .;
Кэрролл, К. С .;
Чанг, К. Дж.
«Химические подходы к открытию и изучению источников и мишеней редокс-сигналов перекиси водорода с помощью белков NADPH-оксидазы»,
Annu.Rev. Biochem.
2015 , г.
84 ,
765-790.
[HTML]
[pdf]

136.
Liu, C .;
Gallagher, J. J .;
Сакимото, К. К .;
Николс, Э. М .;
Chang, C.J .;
Chang, M. C. Y .;
Ян, П.
«Гибриды нанопроводов и бактерий для фиксации солнечного углекислого газа без помощи химических веществ с добавленной стоимостью»,
Nano Lett.
2015 , г.
15 , г.
3634-3639.
[HTML]
[pdf]
[Новости LBNL]
[ Tech Times News Story]
[ Science Times News Story]
[ News Everyday News Story]
[Заголовок DOE Science]
[ Статья в Huffington Post ]
[Статья Statesman ]

135.Lin, V. S .;
Lippert, A.R .;
Чанг, К. Дж.
«Азидные флуоресцентные зонды: отображение сероводорода в живых системах»,
Meth. Энзимол.
2015 , г.
554 ,
63-80
(Глава 4 в документе Сероводород в окислительно-восстановительной биологии, часть A ).
[HTML]
[pdf]

134.
Fu, X .;
Tang, Y .;
Dickinson, B.C .;
Chang, C.J .;
Чанг, З.
«Гипотеза окислительных флуктуаций старения, полученная путем визуализации уровней h3O2 у живых Caenorhabditis elegans с измененной продолжительностью жизни»,
Biochem.Биофиз. Res. Commun.
2015 , г.
458 ,
896-900.
[HTML]
[pdf]

133.
Cotruvo, Jr., J. A .;
Aron, A. T .;
Рамос-Торрес, К. М .;
Чанг, К. Дж.
«Синтетические флуоресцентные зонды для изучения меди в биологических системах»,
Chem. Soc. Сборка
2015 , г.
44 , г.
4400-4414.
[HTML]
[pdf]

132.
Lin, V. S .;
Chen, W .;
Xian, M .;
Чанг, К. Дж.«Химические зонды для молекулярной визуализации и обнаружения сероводорода и активных форм серы в биологических системах»,
Chem. Soc. Сборка
2015 , г.
44 , г.
4596-4618.
[HTML]
[pdf]

131.
Duregotti, E .;
Negro, S .;
Скорцето, М .;
Zornetta, I .;
Dickinson, B.C .;
Chang, C.J .;
Montecucco, C .;
Ригони, М.
«Митохондриальные алармины, высвобождаемые дегенерирующими терминалами моторных аксонов, активируют перисинаптические шванновские клетки»,
Proc.Natl. Акад. Sci. США
2015 , г.
112 ,
E497-E505.
[HTML]
[pdf]

130.
Dodani, S.C .;
Фирл, А .;
Chan, J .;
Nam, C. I .;
Aron, A. T .;
Onak, C. S .;
Рамос-Торрес, К. М .;
Paek, J .;
Webster, C.W .;
Feller, M. B .;
Чанг, К. Дж.
«Медь — эндогенный модулятор спонтанной активности нервной цепи»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2014 , г.
111 ,
16280-16285.
[HTML]
[pdf]
[Новости LBNL]
[C&E News Story]
[Новости журнала R&D]

129.Hong-Hermesdorf, A .;
Miethke, M .;
Gallaher, S.D .;
Kropat, J .;
Dodani, S.C .;
Chan, J .;
Barupala, D .;
Domaille, D. W .;
Shirasaki, S.I .;
Loo, J. A .;
Вебер, П. К .;
Pett-Ridge, J .;
Stemmler, T. L .;
Chang, C.J .;
Купец, С.С.
«Визуализация субклеточного металла выявляет динамические места накопления Cu в Chlamydomonas »,
Nature Chem. Биол.
2014 , г.
10 , г.
1034-1042.
[HTML]
[pdf]

128.Кэрролл, В .;
Michel, B.W .;
Blecha, J .;
VanBrocklin, H .;
Кешари, К .;
Wilson, D .;
Чанг, К. Дж.
«Зонд FLT с боронатной клеткой [ ¹⁸ F] для обнаружения перекиси водорода с использованием позитронно-эмиссионной томографии»,
J. Am. Chem. Soc.
2014 , г.
136 ,
14742-14745.
[HTML]
[pdf]

127.
Ян, М .;
Haase, A.D .;
Хуанг, Ф .;
Coulis, G .;
Ривера, К. Д .;
Дикинсон, Б.C .;
Chang, C.J .;
Паппин, Д. Дж .;
Neubert, T. A .;
Hannon, G.J .;
Boivin, B .;
Тонкс, Н. К.
«Дефосфорилирование тирозина 393 в Argonaute 2 протеином тирозинфосфатазой 1B регулирует молчание генов при онкогенном старении, индуцированном RAS»,
Мол. Ячейка
2014 , г.
55 , г.
782-790.
[HTML]
[pdf]

126.
Sanders, L.H .;
Маккой, Дж .;
Ху, X .;
Мастроберардино, П.Г .;
Dickinson, B.C .;
Чанг, К.J .;
Chu, C.T .;
Van Houten, B .;
Гринамир, Дж. Т.
«Повреждение митохондриальной ДНК: молекулярный маркер уязвимых нейронов черного при болезни Паркинсона»,
Neurobiol. Дис.
2014 , г.
70 ,
214-223.
[HTML]
[pdf]

125.
King, A.E .;
Nippe, M .;
Атанасов, М .;
Chantarojsiri, T .;
Wray, C .;
Bill, E .;
Neese, f .;
Long, J. R .;
Чанг, К. Дж.
«Четко определенный терминальный оксокомплекс ванадия (III)»,
Inorg.Chem.
2014 , г.
53 ,
11388-11395.
[HTML]
[pdf]

124.
Полищук, Е.В .;
Concilli, M .;
Iacobacci, S .;
Chesi, G .;
Pastore, N .;
Piccolo, P .;
Паладино, С .;
Baldantoni, D .;
van IJzendoorn, S.C.D .;
Chan, J .;
Chang, C.J .;
Amoresano, A .;
Pane, F .;
Pucci, P .;
Таралло, А .;
Parenti, G .;
Brunetti-Pierri, N .;
Settembre, C .;
Ballabio, A .;
Полищук, Р.С.
«Белок болезни Вильсона ATP7B использует лизосомный экзоцитоз для поддержания гомеостаза меди»,
Dev.Ячейка
2014 , г.
29 ,
686-700.
[HTML]
[pdf]

123.
Kashyap, D. R .;
Rompca, A .;
Gaballa, A .;
Helmann, J. D .;
Chan, J .;
Chang, C.J .;
Hozo, I .;
Gupta, D .;
Дзярский, Р.
«Белки распознавания пептидогликанов убивают бактерии, вызывая окислительный, тиоловый и металлический стресс»,
PLoS Pathog.
2014 , г.
10 , г.
e1004280.
[HTML]
[pdf]

122.Basu, S .;
Rajakaruna, S .;
Dickinson, B.C .;
Chang, C.J .;
Менько, А.С.
«Производство эндогенной перекиси водорода в эпителии развивающегося эмбрионального хрусталика»,
Мол. Vis.
2014 , г.
20 , г.
458.
[HTML]
[pdf]

121.
Banerjee, J .;
Das Ghatak, P .;
Рой, С .;
Khanna, S .;
Sequin, E.K .;
Bellman, K .;
Dickinson, B.C .;
Suri, P .;
Субраманиам, В.V .;
Chang, C.J .;
Сен, К. К.
«Улучшение миграции кератиноцитов человека с помощью окислительно-восстановительной биоэлектрической повязки»,
PLoS One
2014 , г.
9 , г.
e89239.
[HTML]
[pdf]

120.
Хнайзер, Р. С .;
Thoi, V. S .;
Nippe, M .;
King, A.E .;
Jurss, J. W .;
Эль Роз, К. А .;
Long, J. R .;
Chang, C.J .;
Кастеллано, Ф.
«На пути к всеобъемлющему пониманию фотогенерации водорода в видимом свете из воды с использованием полипиридильных катализаторов кобальта (II)»,
Energy Environ.Sci.
2014 , г.
7 , г.
1477-1488.
[HTML]
[pdf]

119.
Huang, C.P .;
Фофана, М .;
Chan, J .;
Chang, C.J .;
Хауэлл, С.Б.
«Транспортер меди 2 регулирует внутриклеточную медь и чувствительность к цисплатину»,
Металломика
2014 , г.
6 , г.
654-661.
[HTML]
[pdf]

118.
Boivin, B .;
Чаудхари, Ф.;
Dickinson, B.C .;
Haque, A .;
Pero, S.C .;
Chang, C.J .;
Тонкс, Н. К.
«Рецепторная протеин-тирозинфосфатаза α регулирует фосфорилирование киназы очаговой адгезии и подвижность эпителиальных клеток молочной железы, опосредованную онкопротеином ErbB2»,
J. Biol. Chem.
2013 , г.
288 ,
36926-36935.
[HTML]
[pdf]

117.
Sun, Y .;
Liu, C .;
Grauer, D.C .;
Яно, Дж .;
Лонг, Дж.Р.;
Ян, П .;
Чанг, К. Дж.
«Электроосажденный кобальт-сульфидный катализатор для электрохимического и фотоэлектрохимического получения водорода из воды»,
J. Am. Chem. Soc.
2013 , г.
135 ,
17699-17702.
[HTML]
[pdf]

116.
Au-Yeung, H. Y .;
Chan, J .;
Chantarojsiri, T .;
Чанг, К. Дж.
«Молекулярная визуализация пулов лабильного железа (II) в живых клетках с помощью включаемого флуоресцентного зонда»,
Дж.Являюсь. Chem. Soc.
2013 , г.
135 ,
15165-15173.
[HTML]
[pdf]

115. Nippe, M .; Хнайзер, Р. С .; Panetier, J. A .; Zee, D. Z .; Olaiya, B. S .; Хед-Гордон, М .; Chang, C.J .; Castellano, F. N .; Лонг, Дж. Р.
«Каталитическое восстановление протонов комплексами переходных металлов окислительно-восстановительного лиганда bpy2PYMe»,
Chem. Sci.
2013 , г.
4 , г.
3934-3945.
[HTML]
[pdf]

114.Thoi, V. S .;
Корниенко, Н .;
Margarit, C.G .;
Ян, П .;
Чанг, К. Дж.
«Фоторедокс-катализ в видимом свете: избирательное восстановление диоксида углерода до моноксида углерода комплексом никель N -гетероциклический карбен-изохинолин»,
J. Am. Chem. Soc.
2013 , г.
135 ,
14413-14424.
[HTML]
[pdf]

113.
Lin, V. S .; Dickinson, B.C .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные зонды на основе бороната: визуализация перекиси водорода в живых системах»,
Meth.Энзимол.
2013 , г.
526 ,
19–43
(Глава 2 в Перекись водорода и сигнализация клеток, часть A ).
[HTML]

112.
Dickinson, B.C .; Lin, V. S .; Чанг, К. Дж.
«Подготовка и использование MitoPY1 для визуализации перекиси водорода в митохондриях живых клеток»,
Nature Protoc.
2013 , г.
8,
1249-1259.
[pdf]
[HTML]

111.
Кашиф, М.К.;
Nippe, M .;
Даффи, Н. У .;
Forsyth, C.M .;
Chang, C.J .;
Long, J. R .;
Spiccia, L .;
Бах, У .;
«Стабильные сенсибилизированные красителем электролиты солнечных элементов на основе комплексов кобальта (II) / (III) гексадентатного пиридилового лиганда»,
Angew. Chem. Int. Эд.
2013 , г.
52 ,
5527-5531.
[HTML]
[pdf]

110.
Lin, V. S .; Lippert, A.R .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные датчики, улавливаемые клетками, для передачи сигналов и визуализации эндогенного сероводорода H ₂ O ₂ -Dependent H ₂ S Production»,
Proc.Natl. Акад. Sci. США
2013 , г.
110 , г.
7131-7135.
[pdf]
[HTML]
[Новости C&E]
[В центре внимания ЭЛТ]
[Факультет 1000 рекомендаций]

109.
King, A.E .; Сурендранатх, Й .; Пиро, Н. А .; Bigi, J. P .; Long, J. R .; Чанг, К. Дж.
«Механистическое исследование восстановления протонов, катализируемого комплексом пентапиридин-кобальт: доказательства участия анационного пути»,
Chem. Sci.
2013 , г.
4 , г.
1578–1587.[pdf]
[HTML]

108.
Harris, J.M .;
Esain, V .;
Frechette, G.M .;
Харрис, Л. Дж .;
Cox, A. G .;
Cortes, M .;
Гарнаас, М. К .;
Кэрролл, К. Дж .;
Cutting, C. C .;
Хан, Т .;
Elks, P.M .;
Renshaw, S.A .;
Dickinson, B.C .;
Chang, C.J .;
Мерфи, М. П .;
Paw, B.H .;
Vander Heiden, M. G .;
Goessling, W .;
North, T. E .;
«Метаболизм глюкозы влияет на пространственно-временное начало и величину индукции HSC in vivo»,
Кровь
2013 , г.
121 ,
2483-2493.[pdf]
[HTML]

107.
Thoi, V. S .; Sun, Y .; Long, J. R .; Чанг, К. Дж.
«Комплексы земледельческих металлов для каталитического электрохимического получения водорода в водных условиях»,
Chem. Soc. Сборка
2013 , г.
42 , г.
2388-2400.
[pdf]
[HTML]

106.
Van de Bittner, G.C .; Бертоцци, К. Р .; Чанг, К. Дж.
«Стратегия визуализации люциферина с двумя аналитами: биолюминесцентное определение активности перекиси водорода и каспазы in vivo в модели острого воспаления на мышах»,
Дж.Являюсь. Chem. Soc.
2013 , г.
135 ,
1783-1795.
[pdf]
[HTML]

105.
Sun, Y .; Sun, J .; Long, J. R .; Ян, П .; Чанг, К. Дж.
«Фотокаталитическое получение водорода из воды с использованием комплекса пентапиридина кобальта в сочетании с фотосенсибилизаторами на основе молекулярных и полупроводниковых нанопроволок»,
Chem. Sci.
2013 , г.
4 , г.
118-124.
[pdf]
[HTML]

104.Sakai, J .; Li, J .; Субраманиан, К. К .; Mondal, S .; Bajrami, B .; Hattori, H .; Jia, Y .; Dickinson, B.C .; Чжун, Дж .; Е, К .; Chang, C.J .; Хо, Й.-С .; Чжоу, Дж .; Луо, Х. Р.
«Глутатионилирование актина, индуцированное реактивными видами кислорода, контролирует динамику актина в нейтрофилах»,
Иммунитет
2012 , г.
37 , г.
1037-1049.
[HTML]

103.
Chan, J .; Dodani, S.C .; Чанг, К. Дж.
«Реакционные низкомолекулярные флуоресцентные зонды для хемоселективной биовизуализации»,
Nature Chem.
2012 , г.
4 , г.
973-984.
[pdf]
[HTML]

102.
Кашиф, М. К .; Axelson, J.C .; Даффи, Н. У .; Forsyth, C.M .; Chang, C.J .; Long, J. R .; Spiccia, L .; Бах, У.
«Новое направление в разработке окислительно-восстановительного медиатора сенсибилизированных красителями солнечных элементов: точная настройка окислительно-восстановительного потенциала кобальта (II) / (III) на месте посредством взаимодействий с основанием Льюиса»,
J. Am. Chem. Soc.
2012 , г.
134 ,
16646-16653.
[pdf]
[HTML]

101.Lin, V. S .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные зонды для обнаружения и визуализации биологического сероводорода»,
Curr. Opin. Chem. Биол.
2012 , г.
16 , г.
595-601.
[pdf]
[HTML]

100.
Michel, B.W .; Lippert, A.R .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентный зонд на основе реакции для селективной визуализации окиси углерода в живых клетках с использованием палладиевого карбонилирования»,
J. Am. Chem. Soc.
2012 , г.
134 ,
15668-15671.[pdf]
[HTML]
[Новости C&E]

99.
Harman, W. H .; Lichterman, M. F .; Пиро, Н. А .; Чанг, К. Дж.
«Четко определенные органоазидные комплексы ванадия и их превращение в концевые имиды ванадия: структурные снимки и доказательства механизма захвата нитрена»,
Inorg. Chem.
2012 , г.
51 , г.
10037-10042.
[pdf]
[HTML]

98.
Hu, C .; Мори, Т .; Lu, Y .; Guo, Q .; Sun, Y .; Ёнеки, Ю.; Ohsaki, Y .; Nakamichi, T .; Оба, I .; Sato, E .; Ogawa, S .; Dickinson, B.C .; Chang, C.J .; Miyata, T .; Sato, H .; Ито, С.
«Роль специфического блокатора кальциевых каналов Т-типа R (-) эфонидипина в регуляции мозгового кровообращения в почках»,
J. Hypertens.
2012 , г.
30 , г.
1620-1631.
[pdf]
[HTML]

97.
Woolley, J. F .; Naughton, R .; Stanicka, J .; Gough, D. R .; Bhatt, L .; Dickinson, B.C .; Chang, C.J .; Коттер, Т.
«H ₂ O ₂ Продукция ниже по течению от FLT3 опосредована p22phox в эндоплазматическом ретикулуме и необходима для передачи сигналов STAT5»,
PLoS One
2012 , г.
7 , г.
e34050.[pdf]
[HTML]

96.
Au-Yeung, H. Y .; New, E.J .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентный зонд на основе селективной реакции для обнаружения кобальта в живых клетках»,
Chem. Commun.
2012 , г.
48 , г.
5268-5270.
[pdf]
[HTML]

95.
Thoi, V. S .; Karunadasa, H.I .; Сурендранатх, Й .; Long, J. R .; Chang, C.J .;
«Электрохимическое получение водорода из уксусной кислоты с использованием молекулярного молибден-оксокатализатора»,
Energy Environ.Sci.
2012 , г.
5 , г.
7762-7770.
[pdf]
[HTML]

94.
Que, E. L .; New, E.J .; Чанг, К. Дж.
«Проницаемый для клеток гадолиний контрастный агент для магнитно-резонансной томографии меди на модели болезни Менкеса»,
Chem. Sci.
2012 , г.
3 , г.
1829-1834 гг.
[pdf]
[HTML]

93.
Sundstrom, E.J .; Ян, X .; Thoi, V. S .; Karunadasa, H.I .; Chang, C.J .; Лонг, Дж.Р.; Хед-Гордон, М.
«Расчетно-экспериментальное исследование механизма образования водорода из воды с помощью молекулярного молибден-оксо-электрокатализатора»,
J. Am. Chem. Soc.
2012 , г.
134 ,
5233-5242.
[pdf]
[HTML]

92.
Cusick, K. D .; Минкин, младший, С. Ц .; Dodani, S.C .; Chang, C.J .; Wilhelm, S.W .; Сэйлер Г. С.
«Ингибирование поглощения меди дрожжами показывает, что переносчик меди Ctr1p является потенциальной молекулярной мишенью сакситоксина»,
Environ.Sci. Technol.
2012 , г.
46 , г.
2959-2966.
[pdf]
[HTML]

91.
Karunadasa, H.I .; Montalvo, E .; Sun, Y .; Majda, M .; Long, J. R .; Чанг, К. Дж.
«Молекулярный имитатор краевого участка MoS ₂ для каталитического производства водорода»,
Наука
2012 , г.
335 ,
698-702.
[pdf]
[HTML]
[Пресс-релиз Калифорнийского университета в Беркли]
[Пресс-релиз LBNL]
[Статья Daily Cal]
[Статья C&E News]

90.Hirayama, T .; Van de Bittner, G.C .; Gray, L.W .; Луценко, С .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентный датчик ближнего инфракрасного диапазона для визуализации меди in vivo на мышиной модели болезни Вильсона»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2012 , г.
109 , г.
2228-2233.
[pdf]
[HTML]

89.
Zadrozny, J.M .; Liu, J .; Пиро, Н. А .; Chang, C.J .; Hill, S .; Лонг Дж. Р.
«Медленная магнитная релаксация в псевдотетраэдрическом комплексе кобальта (II) с анизотропией типа легкая плоскость»,
Chem.Commun.
2012 , г.
48 , г.
3927-3929.
[pdf]
[HTML]

88.
Bigi, J. P .; Harman, W. H .; Lassalle-Kaiser, B .; Роблес, Д. М .; Stich, T. A .; Яно, Дж .; Britt, R.D .; Чанг К. Дж.
«Комплекс высокоспинового железа (IV) -оксо, поддерживаемый тригональной негемовой пирролидной платформой»,
J. Am. Chem. Soc.
2012 , г.
134 ,
1536-1542.
[pdf]
[HTML]

87.
Ohsaki, Y .; О’Коннор, П.; Мори, Т .; Ryan, R.P .; Dickinson, B.C .; Chang, C.J .; Lu, Y .; Ито, С .; Коули-младший, А.В.
«Увеличение доставки натрия стимулирует митохондриальную дыхательную цепь H ₂ O ₂ Производство в толстой восходящей конечности мозгового вещества почек крысы»,
Am. J. Physiol. Почечный. Physiol.
2012 , г.
302 , г.
F95-F102.
[pdf]
[HTML]

86.
Wrighton, K. C .; Thrash, J.C .; Мельник, Р. А .; Bigi, J. P .; Бирн-Бейли, К.ГРАММ. ; Remis, J. P .; Schichnes, D .; Ауэр, М .; Chang, C.J .; Коутс, Дж. Д.
«Доказательства прямого переноса электронов грамположительными бактериями, выделенными из микробного топливного элемента»,
Заявл. Environ. Microbiol.
2011 , г.
77 ,
7633-7639.
[pdf]
[HTML]

85.
Beaudoin, J .; Ioannoni, R .; López-Maury, L .; Bähler, J .; Ait-Mohand, S .; Guérin, B .; Dodani, S.C .; Chang, C.J .; Лаббе, С.
«Mfc1 является новым переносчиком меди через мембрану передоспор в мейотических и спорулирующих клетках»,
Дж.Биол. Chem.
2011 , г.
286 ,
34356-34372.
[pdf]
[HTML]

84.
Dickinson, B.C .; Tang, Y .; Chang, Z .; Чанг, К. Дж.
«Ядерно-локализованный флуоресцентный зонд перекиси водорода для мониторинга сиртуин-опосредованной реакции на окислительный стресс in vivo»,
Chem. Биол.
2011 , г.
18 , г.
943-948.
[pdf]
[HTML]

83.
Lippert, A.R .; Van de Bittner, G.C .; Чанг, К.Дж.
«Окисление бороната как подход биоортогональной реакции для изучения химии перекиси водорода в живых системах»,
В соотв. Chem. Res.
2011 , г.
44 , г.
793-804.
[pdf]
[HTML]

82.
Chung, C .; Srikun, D .; Lim, C. S .; Chang, C.J .; Чо, Б. Р.
«Двухфотонный флуоресцентный зонд для ратиометрической визуализации перекиси водорода в живой ткани»,
Chem. Commun.
2011 , г.
47 , г.
9618-9620.[pdf]
[HTML]

81.
Lu, J .; Эспозито, G .; Scuderi, C .; Steardo, L .; Delli-Bovi, L.C .; Hecht, J. L .; Dickinson, B.C .; Chang, C.J .; Мори, Т .; Шин, В.
«S100B и APP способствуют глиоцентрическому сдвигу и нарушению нейрогенеза в нейронных предшественниках синдрома Дауна»,
PLoS ONE
2011 , г.
6 , г.
e22126.
[pdf]
[HTML]

80.
Dickinson, B.C .; Чанг, К. Дж.
«Химия и биология активных форм кислорода в сигнальных или стрессовых реакциях»,
Nature Chem.Биол.
2011 , г.
7 , г.
504-511.
[pdf]
[HTML]

79.
Lippert, A.R .; New, E.J .; Чанг, К. Дж.
«Реакционные флуоресцентные зонды для селективной визуализации сероводорода в живых клетках»,
J. Am. Chem. Soc.
2011 , г.
133 ,
10078-10080.
[pdf]
[HTML]
[Новости C&E]

78.
Sun, Y .; Bigi, J. P .; Пиро, Н. А .; Tang, M. L .; Long, J. R .; Чанг, К.Дж.
«Молекулярные пентапиридиновые катализаторы кобальта для получения водорода из воды»,
J. Am. Chem. Soc.
2011 , г.
133 ,
9212-9215.
[pdf]
[HTML]

77.
Dodani, S.C .; Лири, С. С .; Cobine, P.A .; Winge, D. R .; Чанг, К. Дж.
«Направляемый флуоресцентный датчик показывает, что клетки пациента с дефицитом меди SCO1 и SCO2 отдают приоритет митохондриальному гомеостазу меди»,
J. Am. Chem. Soc.
2011 , г.
133 ,
8606-8616.
[pdf]
[HTML]

76.
Той, В. С. и Чанг, К. Дж.
«Никель-N-гетероциклические карбен-пиридиновые комплексы, проявляющие селективность электрокаталитического восстановления диоксида углерода над водой»,
Chem. Commun.
2011 , г.
47 , г.
6578-6580.
[pdf]
[HTML]

75.
Harris, T. D .; Soo, H. S .; Chang, C.J .; Лонг, Дж. Р.
«Кластер Fe ^II Re ^IV (CN) ₂ с циано-мостиковой связью, включающий в себя два элемента построения высокомагнитной анизотропии»,
Inorg.Чим. Acta
2011 , г.
369 ,
91-96
(специальный выпуск в честь Роберта Г. Бергмана) .
[pdf]
[HTML]

74.
Soo, H. S .; Sougrati, M.T .; Grandjean, F .; Long, G.J .; Чанг, К. Дж.
«Семикоординатная железная платформа и ее оксо- и нитренореактивность»,
Inorg. Чим. Acta
2011 , г.
369 ,
82-91
(специальный выпуск в честь Роберта Г. Бергмана) .
[pdf]
[HTML]

73.Мерфи, М. П .; Holmgren, A .; Larsson, N.-G .; Halliwell, B .; Chang, C.J .; Kalyanaraman, B .; Rhee, S.G .; Thornalley, P.J .; Куропатка, L .; Самоцветы, D .; Nyström, T .; Белоусов, В .; Schumacker, P.T .; Уинтерборн, К.
«Раскрытие биологической роли активных форм кислорода»,
Cell Metab.
2011 , г.
13 , г.
361-366.
[pdf]
[HTML]

72.
Dodani, S.C .; Domaille, D. W .; Nam, C. I .; Miller, E.W .; Finney, L.A .; Vogt, S .; Чанг, К.Дж.
«Зависимое от кальция перераспределение меди в нейронных клетках, выявленное флуоресцентным датчиком меди и рентгеновской флуоресцентной микроскопией»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2011 , г.
108 ,
5980-5985.
[pdf]
[HTML]

71.
Srikun, D .; Albers, A.E .; Чанг, К. Дж.
«Платформа на основе дендримеров для одновременной двойной флуоресцентной визуализации пероксида водорода и градиентов pH, создаваемых в живых клетках»,
Chem. Sci.
2011 , г.
2 , г.
1156-1165.[pdf]
[HTML]

70.
Lippert, A.R .; Кешари, К. Р .; Kurhanewicz, J .; Чанг, К. Дж.
«Чувствительный к перекиси водорода гиперполяризованный ¹³ C Контрастный агент для МРТ»,
J. Am. Chem. Soc.
2011 , г.
133 ,
3776-3779.
[pdf]
[HTML]

69.
Santo, C.E .; Lam, E.W .; Elowsky, C.G .; Quaranta, D .; Domaille, D. W .; Chang, C.J .; Грасс, Г.
«Уничтожение бактерий сухими металлическими поверхностями из меди»,
Заявл.Environ. Microbiol.
2011 , г.
77 ,
794-802.
[pdf]
[HTML]

68.
Quaranta, D .; Кранс, Т .; Santo, C.E .; Elowsky, C.G .; Domaille, D. W .; Chang, C.J .; Грасс, Г.
«Механизмы контактно-опосредованного уничтожения дрожжевых клеток на сухой металлической поверхности меди»,
Заявл. Environ. Microbiol.
2011 , г.
77 ,
416-426.
[pdf]
[HTML]

67.
Пиро, Н.А., Лихтерман, М.Ф., Харман, В. Х., Чанг, К. Дж.
«Комплекс оксида азота ванадия со структурными характеристиками»,
J. Am. Chem. Soc.
2011 , г.
133 ,
2108-2111.
[pdf]
[HTML]

66.
Schrag, M .; Crofton, A .; Забель, М .; Jiffry, A .; Кирш, Д .; Диксон, А .; Mao, X. W .; Винтерс, Х. В .; Domaille, D. W .; Chang, C.J .; Кирш, В.
«Влияние церебральной амилоидной ангиопатии на железо, медь и цинк в мозге при болезни Альцгеймера»,
Дж.Alzheimers Dis.
2011 , г.
24 , г.
137-149.
[pdf]
[HTML]

65.
Дикинсон, Б.С., Пельтье, Дж., Стоун, Д., Шаффер, Д.В., Чанг, К.Дж.
«Передача сигналов окислительно-восстановительного потенциала Nox2 поддерживает важные популяции клеток в головном мозге»,
Nature Chem. Биол.
2011 , г.
7 , г.
106-112.
[pdf]
[HTML]

64.
Харман У. Х., Харрис Т. Д., Фридман Д. Э., Фонг Х., Чанг А., Райнхарт Дж.Д., Озаровски, А., Суграти, М. Т., Гранджин, Ф., Лонг, Г. Дж., Лонг, Дж. Р., Чанг, К. Дж.
«Медленная магнитная релаксация в семействе тригональных пирамидных пирролидных комплексов железа (II)»,
J. Am. Chem. Soc.
2010 , г.
132 , г.
18115-18126.
[pdf]
[HTML]

63.
Ван де Биттнер, Г. К., Дубиковская Э. А., Бертоцци, К. Р., Чанг, К. Дж.
«In vivo визуализация производства перекиси водорода в мышиной модели опухоли с хемоселективным биолюминесцентным репортером»,
Proc.Natl. Акад. Sci. США
2010 , г.
107 ,
21316-21321.
[pdf]
[HTML]
[Факультет 1000 оценок]
[LBL Highlight]

62.
Miller, E.W .; Taulet, N .; Onak, C. S .; New, E.J .; Lanselle, J. K .; Smelick, G.S .; Чанг, К. Дж.
«Свето-активируемое регулирование динамики кофилина с помощью фотокамеры генератора перекиси водорода»,
J. Am. Chem. Soc.
2010 , г.
132 , г.
17071-17073.
[pdf]
[HTML]

61.Lippert, A.R .; Gschneidtner, T .; Чанг, К. Дж.
«Люминесцентные зонды на основе лантанидов для селективного определения перекиси водорода в воде и в живых клетках с синхронизацией по времени»,
Chem. Commun.
2010 , г.
46 , г.
7510-7512. [pdf]
[HTML]

60.
Miller, E.W .; Dickinson, B.C .; Чанг, К. Дж.
«Аквапорин-3 опосредует поглощение перекиси водорода для регулирования нисходящей внутриклеточной передачи сигналов»,
Proc. Natl. Акад. Sci. США
2010 , г.
107 ,
15681-15686.[pdf]
[HTML]
[Обзор ACS Chembio]
[Факультет 1000 оценок]

59.
Cheng, W.-Y .; Тонг, H .; Miller, E.W .; Chang, C.J .; Remington, J .; Zucker, R.M .; Бромберг, П. А .; Samet, J.M .; Хофер, Т. П. Дж.
«Комплексный подход к визуализации для изучения образования окислительного стресса митохондриальной дисфункцией в живых клетках»,
Environ. Перспективы в области здравоохранения
2010 , г.
118 ,
902-908.
[pdf]

58.Karunadasa, H.I .; Chang, C.J .; Лонг, Дж. Р.
«Молибден-оксо-катализатор для получения водорода из воды»,
Природа
2010 , г.
464 ,
1329-1333.
[pdf]

57.
Dickinson, B.C .; Huynh, C .; Чанг, К. Дж.
«Палитра флуоресцентных датчиков с различными цветами излучения для визуализации сигналов перекиси водорода в живых клетках»,
J. Am. Chem. Soc.
2010 , г.
132 , г.
5906-5915.[pdf]
[HTML]

56.
Srikun, D .; Albers, A.E .; Nam, C. I .; Iavarone, A.T .; Чанг, К. Дж.
«Флуоресцентные зонды для нацеливания на органеллы для визуализации перекиси водорода в живых клетках посредством маркировки белков с помощью меток SNAP»,
J. Am. Chem. Soc.
2010 , г.
132 , г.
4455-4465.
[pdf]

55. Freedman, D.E .; Harman, W. H .; Harris, T. D .; Long, G.J .; Chang, C.J .; Лонг, Дж. Р. «Медленная магнитная релаксация в высокоспиновом комплексе железа (II)», J.Являюсь. Chem. Soc. 2010 , 132 , 1224-1225. [pdf]

54. Domaille, D. W .; Zeng, L .; Чанг, К. Дж. «Визуализация инициируемого аскорбатом высвобождения лабильной меди в живых клетках с использованием ратиометрического флуоресцентного датчика», J. Am. Chem. Soc. 2010 , 132 , 1194-1195. [pdf]

53. Bigi, J. P .; Hanna, T. E .; Harman, W. H .; Чанг, А .; Чанг, К. Дж. «Электрокаталитическое восстановление протонов до водорода с помощью водосовместимой кобальтополипиридильной платформы», Chem.Commun. 2010 , 46 , 958-960. [pdf]

52. Que, E. L .; Gianolio, E .; Baker, S.L .; Aime, S .; Чанг, К. Дж. «Контрастный агент для магнитно-резонансной томографии, активируемый медью, с улучшенной релаксационной реакцией при включении и совместимостью с анионами», Dalton Trans. 2010 , 39 , 469-476 (специальный выпуск) . [pdf]

51. Dickinson, B.C .; Srikun, D .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентные зонды, нацеленные на митохондрии, для определения активных форм кислорода», Curr.Opin. Chem. Биол. 2010 , 14 , 50-56. [pdf]

50. Que, E. L .; Чанг, К. Дж. «Загрязняющие агенты для чувствительной магнитно-резонансной томографии как химические сенсоры металлов в биологии и медицине», Chem. Soc. Ред. 2010 , 39 , 51-60. [pdf]

49. Dodani, S. C .; Он, Q .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентный датчик включения для обнаружения никеля в живых клетках», J. Am. Chem. Soc. 2009 , 131 , 18020-18021.[pdf]

48. Soo, H. S .; Komor, A. C .; Iavarone, A.T .; Чанг, К. Дж. «Облегченный цикл с водородной связью для восстановления кислорода с помощью железной платформы, совместимой с кислотами и основаниями», Inorg. Chem. 2009 , 48 , 10024-10035. [pdf]

47. Bao, L .; Авшалумов, М. В .; Miller, E.W .; Chang, C.J .; Райс, М. Е. Дж. «Митохондрии являются источником перекиси водорода для динамической передачи сигналов между клетками мозга», J. Neurosci. 2009 , 29 , 9002-9010.[pdf]

46. Que, E. L .; Gianolio, E .; Baker, S.L .; Wong, A. P .; Aime, S .; Чанг, К. Дж. «Медь-чувствительные контрастные агенты для магнитно-резонансной томографии», J. Am. Chem. Soc. 2009 , 131 , 8527-8536. [pdf]

45. Albers, A.E .; Dickinson, B.C .; Miller, E.W .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентный зонд на основе нафтофлуоресцеина, излучающий в красный цвет, для селективного обнаружения перекиси водорода в живых клетках», Bioorg. Med.Chem. Lett. 2008 , 18 , 5948-5950 (специальный выпуск в честь Бенджамина Ф. Краватта) . [pdf]

44. Dickinson, B.C .; Чанг, К. Дж. «Целевой флуоресцентный зонд для визуализации перекиси водорода в митохондриях живых клеток», J. Am. Chem. Soc. 2008 , 130 , 9638-9639. [pdf]
[Новости C&E]
[Обзор Angewandte Chemie]

43. Miller, E.W .; Он, Q .; Чанг, К. Дж. «Получение и использование свинца-1, синтетического флуорофора для визуализации свинца в живых клетках», Nature Protocols 2008 , 3 , 777-783.[pdf]

42. Que, E. L .; Domaille, D. W .; Чанг, К. Дж. «Металлы в нейробиологии: исследование их химии и биологии с помощью молекулярной визуализации», Chem. Ред. 2008 , 108 , 1517-1549. [pdf]

41. Srikun, D .; Miller, E.W .; Domaille, D. W .; Чанг, К. Дж. «Основанный на ИКТ подход к радиометрической флуоресцентной визуализации перекиси водорода, продуцируемой в живых клетках», J. Am. Chem. Soc. 2008 , 130 , 4596-4597.[pdf]

40. Domaille, D. W .; Que, E. L .; Чанг, К. Дж. «Синтетические флуоресцентные датчики для изучения клеточной биологии металлов», Nature Chem. Биол. 2008 , 4 , 168-175. [pdf]

39. Harman, W. H .; Chang, C.J. «N ₂ Реакционная способность активации и окисления O из пиррольной платформы негемового железа», J. Am. Chem. Soc. 2007 , 129 , 15128-15129. [pdf]

38.Miller, E.W .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентные зонды для оксида азота и перекиси водорода в передаче сигналов в клетке» Curr. Opin. Chem. Биол. 2007 , 11 , 620-625. [pdf]

37. Albers, A.E .; Ролз, К. А .; Чанг, С. Дж. «Флуоресцентные репортеры на основе активности для моноаминоксидаз в живых клетках», Chem. Commun. 2007 , 4647-4649. [pdf]

36. Yoon, S .; Miller, E.W .; Он, Q .; Do, P.H .; Чанг, К. Дж. «Яркий и специфический флуоресцентный датчик для определения содержания ртути в воде, клетках и тканях», Angew.Chem. Int. Эд. 2007 , 46 , 6658-6661. [pdf]

35. Miller, E.W .; Tulyathan, O .; Isacoff, E. Y .; Чанг, К. Дж. «Молекулярная визуализация перекиси водорода, продуцируемой для передачи сигналов клетками», Nature Chem. Биол. 2007 , 3 , 263-267. [pdf] [C&E News]

34. Miller, E.W .; Bian, S. X .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентный датчик для визуализации обратимых окислительно-восстановительных циклов в живых клетках», J. Am.Chem. Soc. 2007 , 129 , 3458-3459. [pdf]

33. Que, E. L .; Чанг, К. Дж. «Интеллектуальный магнитно-резонансный контрастный агент для селективного определения меди», J. Am. Chem. Soc. 2006 , 128 , 15942-15943. [pdf]

32. Miller, E.W .; Zeng, L .; Domaille, D. W .; Чанг, К. Дж. «Подготовка и
Использование Coppersensor-1, синтетического флуорофора для визуализации меди живых клеток », Nature Protocols 2006 , 1 , 824-827.[pdf]

31. Albers, A.E .; Окреглак, В. С .; Чанг, К. Дж. «Основанный на FRET подход к ратиометрическому флуоресцентному обнаружению перекиси водорода», J. Am. Chem. Soc. 2006 , 128 , 9640-9641. [pdf]

30. He, Q .; Miller, E.W .; Wong, A. P .; Чанг, К. Дж.
«Селективный флуоресцентный датчик для обнаружения свинца в живых клетках», J. Am. Chem. Soc. 2006 , 128 , 9316-9317. [pdf]

29.Zeng, L .; Miller, E.W .; Pralle, A .; Isacoff, E. Y .; Чанг, К. Дж. «Селективный включаемый флуоресцентный датчик для визуализации меди в живых клетках», J. Am. Chem. Soc. 2006 , 128 , 10-11.
[pdf]

28. Miller, E.W .; Albers, A.E .; Pralle, A .; Isacoff, E. Y .; Чанг, К. Дж. «Флуоресцентные зонды на основе бороната для визуализации клеточной перекиси водорода», J. Am. Chem. Soc. 2005 , 127 , 16652-16659. [pdf]

27.Юн, S .; Albers, A.E .; Wong, A. P .; Чанг, К. Дж. «Скрининг уровней ртути в рыбе с помощью селективного флуоресцентного хемосенсора», J. Am. Chem. Soc. 2005 , 127 , 16030-16031. [pdf] [C&E News]

26. Chang, M. C. Y .; Pralle, A .; Isacoff, E. Y .; Чанг, К. Дж. «Селективный, проницаемый для клеток оптический зонд для определения перекиси водорода в живых клетках», J. Am. Chem. Soc. 2004 , 126 , 15392-15393. [html] [C&E News]

25.Chang, C.J .; Липпард, С. Дж. «Металлонейрохимия цинка: физиология, патология и пробы», В Ионы металлов в науках о жизни: нейродегенеративные заболевания и ионы металлов . 2006 , Т. 1 , стр. 321-370.

24. Giblin, L.J .; Chang, C.J .; Bentley, A. F .; Frederickson, C .; Lippard, S.J .; Фредериксон, К. Дж. «Цинк-секретирующие клетки Панета, исследованные с помощью флуоресценции ZP», J. Histochem. Cytochem. 2006 , 54 , 311-316.

23.Chang, C.J .; Nolan, E.M .; Jaworski, J .; Окамото, К .; Hayashi, T .; Sheng, M .; Липпард, С.Дж. «ZP8, усовершенствованный нейрональный датчик цинка из семейства ZP: применение для визуализации цинка в срезах гиппокампа с помощью двухфотонной микроскопии», Inorg. Chem. 2004 , 43 , 6774-6779.

22. Chang, C.J .; Loh, Z.-H .; Shi, C .; Энсон, ФК Ночера, Д. Г. «Нацеленная доставка протонов в катализируемом восстановлении кислорода до воды биметаллическими порфиринами Pacman», J. Am.Chem. Soc. 2004 , 126 , 10013-10020.

21. Chang, C.J .; Chang, M.C.Y .; Damrauer, N.H .; Ночера, Д. «Связанный с протонами перенос электронов. Объединяющий механизм для переноса биологического заряда, инициирования и распространения аминокислотных радикалов, а также реакций образования / разрыва связи воды и кислорода», Biochim. Биофиз. Acta 2004 , 1655 , 13-28.

20. Chang, C.J .; Nolan, E.M .; Jaworski, J .; Burdette, S.C .; Шэн, М.; Липпард, С.Дж. «Яркие флуоресцентные хемосенсорные платформы для визуализации эндогенных пулов нейронального цинка», Chem. Биол. 2004 , 11 , 203-210.

19. Chang, C.J .; Jaworski, J .; Nolan, E.M .; Sheng, M .; Липпард, С.Дж. «Таутомерный цинковый сенсор для ратиометрической флуоресцентной визуализации: применение для индуцированного оксидом азота высвобождения внутриклеточного цинка», Proc. Natl. Акад. Sci. США 2004 , 101 , 1129-1134.

18.Hodgkiss, J.M .; Chang, C.J .; Писторио, Б.Дж .; Ночера, Д. Г. «Исследования переходного поглощения эффекта Пакмана в подпружиненных мю-оксо-биспорфиринах Diiron (III)», Inorg. Chem. 2003 , 42 , 8270-8277.

17. Chang, C.J .; Loh, Z.-H .; Deng, Y .; Ночера, Д. Г. «Эффект Пакмана: супрамолекулярная стратегия управления динамикой возбужденного состояния столбчатых кофациальных биспорфиринов», Inorg. Chem. 2003 , 42 , 8262-8269.

16. Chng, L.-L .; Chang, C.J .; Ночера, Д. Г. «Мезо-тетраарил кофациальные биспорфирины, полученные с помощью кросс-сцепления Suzuki», J. Org. Chem. 2003 , 68 , 4075-4078.

15. Chng, L.-L .; Chang, C.J .; Ночера, Д. Г. «Каталитическая химия активации O-O, опосредованная порфиринами железного палача с широким диапазоном способностей донорства протонов», Org. Lett. 2003 , 5 , 2421-2424.

14. Chang, C.J .; Чнг, Л.-L .; Ночера, Д. Г. «Протонно-связанная O-O активация на окислительно-восстановительной платформе, несущей водородно-связанный каркас», J. Am. Chem. Soc. 2003 , 125 , 1866-1876.

13. Loh, Z.-H .; Miller, S.E .; Chang, C.J .; Карпентер, С. Д .; Ночера, Д. Г. «Динамика возбужденного состояния кофасиальных порфиринов Pacman», J. Phys. Chem. А 2002 , 106 , 11700-11708.

12. Pistorio, B.J .; Chang, C.J .; Ночера, Д. Г. «Молекулярная пружина с фототриггером для аэробных каталитических реакций окисления», J.Являюсь. Chem. Soc. 2002 , 124 , 7884-7885.

11. Chang, C.J .; Бейкер, Э. А .; Писторио, Б. Дж .; Deng, Y .; Loh, Z.-H .; Miller, S.E .; Карпентер, С. Д .; Ночера, Д. Г. «Сравнение структур, спектроскопии и реакционной способности кофациальных биспорфиринов, связанных с ксантеном и дибензофураном», Inorg. Chem. 2002 , 41 , 3102-3109.

10. Chang, C.J .; Deng, Y .; Lee, G.-H .; Peng, S.-M .; Yeh, C.-Y .; Ночера, Д. Г. «Конвергентный синтетический подход с использованием стерически сложных арил-дипиррилметанов для настройки карманных размеров кофациальных биспорфиринов», Inorg.Chem. 2002 , 41 , 3008-3016.

9. Chang, C.J .; Yeh, C.-Y .; Ночера, Д. Г. «Порфирины, несущие функционализированные ксантеновые прокладки», J. Org. Chem. 2002 , 67 , 1403-1406.

8. Chang, C.J .; Brown, J. D. K .; Chang, M. C. Y .; Бейкер, Э. А .; Ночера, Д. Г. «Электронный перенос в водородно-связанных супрамолекулах донор-акцептор», В Электронный перенос в химии , В. Бальзани Эд., Wiley-VCH, Weinheim, Германия, 2001, Vol.3.2.4., С. 409-461.

7. Yeh, C.-Y .; Chang, C.J .; Ночера, Д. Г. «Порфирины» палача «для сборки модельного водного канала гема», J. Am. Chem. Soc. 2001 , 123 , 1513-1514.

6. Chang, C.J .; Deng, Y .; Shi, C .; Chang, C.K .; Anson, F.C .; Ночера, Д. Г. «Электрокаталитическое четырехэлектронное восстановление кислорода до воды с помощью высокоэластичного кофациального биспорфирина кобальта», Chem. Commun. 2000 , 1355-1356.

5.Chang, C.J .; Deng, Y .; Heyduk, A. F .; Chang, C.K .; Ночера, Д. Г. «Ксантен-мостиковые кофациальные биспорфирины», Inorg. Chem. 2000 , 39 , 959-966.

4. Deng, Y .; Chang, C.J .; Ночера, Д. Г. «Прямое наблюдение эффекта« Pac-Man »от кофациальных биспорфиринов с дибензофурановым мостиком» J. Am. Chem. Soc. 2000 , 122 , 410-411.

3. Chang, C.J .; Connick, W. B .; Low, D. W .; Дэй, М. З .; Грей, Х. Б. «Электронные структуры комплексов нитридомарганца (V)», Неорг.Chem. 1998 , 37 , 3107-3110.

2. Chang, C.J .; Labinger, J. A .; Грей, Х. Б. «Аэробное эпоксидирование олефинов, катализируемое электроотрицательными комплексами ванадил-сален», Inorg. Chem. 1997 , 36 , 5927-5930.

1. Chang, C.J .; Low, D. W .; Грей, Х. Б. «Обратимый перенос атома азота между нитридомарганцевыми (V) и марганцевыми (III) комплексами Шиффа с основанием», Inorg. Chem. 1997 , 36 , 270-271.

.